英文缩略词 | 第7-9页 |
中文摘要 | 第9-11页 |
英文摘要 | 第11-12页 |
1 前言 | 第13-14页 |
2 材料与方法 | 第14-27页 |
2.1 材料 | 第14-18页 |
2.1.1 实验动物 | 第14页 |
2.1.2 药品与试剂 | 第14-16页 |
2.1.3 实验仪器 | 第16-18页 |
2.2 方法 | 第18-27页 |
2.2.1 Caco-2 细胞通透性模型的建立及分组 | 第18页 |
2.2.2 具备高同型半胱氨酸血症的实验性结肠炎模型的建立及分组 | 第18-19页 |
2.2.3 标本采集 | 第19页 |
2.2.4 检测方法 | 第19-27页 |
2.2.4.1 Caco-2 细胞通透性检测 | 第19-20页 |
2.2.4.2 实验性结肠炎疾病活动指数评分 | 第20页 |
2.2.4.3 实验性结肠炎大鼠模型结肠组织大体观察和病理检查 | 第20-21页 |
2.2.4.4 实验性结肠炎大鼠小肠粘膜通透性检测 | 第21-22页 |
2.2.4.5 实验性结肠炎大鼠血浆及结肠中Hcy及MLCK水平检测 | 第22页 |
2.2.4.6 实验性结肠炎大鼠结肠粘膜组织MPO活性测定 | 第22-23页 |
2.2.4.7 免疫组化法检测实验性结肠炎大鼠小肠粘膜组织中ZO-1,Claudin-1, Claudin-2, Occludin蛋白表达水平 | 第23页 |
2.2.4.8 Western blot法检测实验性结肠炎大鼠小肠粘膜组织标本及Caco-2 细胞中MEK,ERK,p-ERK, MLCK, p-MLCK, ZO-1, Claudin-1,Claudin-2, Occludin蛋白表达水平 | 第23-25页 |
2.2.4.9 RT-qPCR检测实验性结肠炎大鼠小肠粘膜组织标本中MLCKmRNA相对表达 | 第25-27页 |
2.2.5 数据统计分析 | 第27页 |
3 实验结果 | 第27-41页 |
3.1 不同浓度Hcy对Caco-2 细胞通透性的影响 | 第27-29页 |
3.2 Hcy影响Caco-2 细胞细胞通透性机制的初步探讨 | 第29-34页 |
3.3 Hcy对实验性结肠炎大鼠结肠炎症损伤的影响 | 第34-36页 |
3.4 Hcy对实验性结肠炎大鼠小肠肠粘膜通透性的影响 | 第36-37页 |
3.5 Hcy对实验性结肠炎大鼠结肠中MLCK表达水平的影响 | 第37页 |
3.6 Hcy对实验性结肠炎大鼠小肠肠粘膜中MEK,ERK,p-ERK,MLCK,p-MLCK,Claudin-1,Claudin-2,Occludin及ZO-1 蛋白及MLCK mRNA表达的影响 | 第37-41页 |
4 讨论 | 第41-45页 |
5 结论 | 第45页 |
6 存在的不足 | 第45-46页 |
7 参考文献 | 第46-52页 |
附录 | 第52-53页 |
致谢 | 第53-54页 |
综述 | 第54-61页 |
参考文献 | 第59-61页 |