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柔嫩艾美耳球虫组蛋白去乙酰化酶Sir2克隆表达及表达动态分析

摘要第6-7页
Abstract第7页
英文缩略表第11-13页
第一章 引言第13-24页
    1.1 鸡球虫病及其防治第13页
    1.2 表观遗传学第13-14页
    1.3 组蛋白乙酰化第14-15页
    1.4 组蛋白去乙酰化酶第15-16页
        1.4.1 HDACs的亚细胞分布第15-16页
        1.4.2 HDACs的功能第16页
    1.5 NAD+依赖的组蛋白去乙酰化酶第16-20页
        1.5.1 Sir2的蛋白质结构第16-18页
        1.5.2 亚细胞定位第18-19页
        1.5.3 Sirtuins的生物功能第19页
        1.5.4 Sirtuins的催化机制第19-20页
    1.6 寄生原虫的Sir2研究进展第20-22页
        1.6.1 分类第20-21页
        1.6.2 结构第21页
        1.6.3 功能第21-22页
    1.7 艾美耳球虫HDACS研究的目的和意义第22-24页
第二章 E. tenella Sir2基因克隆第24-36页
    2.1 材料第24-25页
        2.1.1 虫株第24页
        2.1.2 菌株和载体第24页
        2.1.3 主要试剂与仪器第24页
        2.1.4 试剂的配制第24-25页
    2.2 方法第25-29页
        2.2.1 E. tenella接种第25页
        2.2.2 第二代裂殖子、卵囊、子孢子的收集纯化第25页
        2.2.3 合成第一链cDNA第25-26页
        2.2.4 EtSir2A及EtSir2B基因扩增第26-28页
        2.2.5 菌液鉴定与测序第28-29页
        2.2.6 EtSir2A核酸序列和氨基酸序列分析第29页
    2.3 结果与分析第29-35页
        2.3.1 EtSir2A基因ORF的预测第29-30页
        2.3.2 EtSir2A和EtSir2B PCR扩增结果第30页
        2.3.3 菌液鉴定第30-31页
        2.3.4 测序结果第31-34页
        2.3.5 系统进化分析第34-35页
    2.4 讨论第35页
    2.5 小结第35-36页
第三章 球虫不同发育阶段EtSir2A的表达差异第36-43页
    3.1 材料第36页
        3.1.1 主要试剂第36页
        3.1.2 主要仪器第36页
        3.1.3 荧光定量PCR模板第36页
    3.2 方法第36-38页
        3.2.1 引物设计第36页
        3.2.2 实时荧光定量PCR(qRT-PCR)扩增第36-38页
    3.3 结果与分析第38-41页
        3.3.1 E. tenella广东株不同发育时期总RNA的提取第38页
        3.3.2 EtSir2A特异引物检测结果第38-39页
        3.3.3 扩增效率检测及标准曲线的建立第39-40页
        3.3.4 EtSir2A mRNA转录量差异分析第40-41页
    3.4 讨论第41-42页
    3.5 小结第42-43页
第四章 Et Sir2A序列分析及原核表达第43-53页
    4.1 材料第43-44页
        4.1.1 菌株与载体第43页
        4.1.2 酶与主要试剂第43页
        4.1.3 仪器设备第43页
        4.1.4 试剂配制第43-44页
    4.2 方法第44-48页
        4.2.1 EtSir2A核酸和蛋白质分析第44页
        4.2.2 构建pMAL-c2x-EtSir2A原核表达载体第44-46页
        4.2.3 原核表达第46-48页
    4.3 结果第48-52页
        4.3.1 EtSir2A序列的初步分析第48-50页
        4.3.2 重组表达质粒pMAL-c2x- EtSir2A双酶切鉴定结果第50-51页
        4.3.3 EtSir2A-MBP融合表达结果及其可溶性分析第51-52页
    4.4 讨论第52页
    4.5 小结第52-53页
第五章 全文结论第53-54页
参考文献第54-59页
附录第59-60页
致谢第60-61页
作者简历第61页

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