摘要 | 第6-7页 |
abstract | 第7-8页 |
英文缩略表 | 第14-15页 |
第一章 引言 | 第15-23页 |
1.1 研究目的和意义 | 第15页 |
1.2 国内外研究现状 | 第15-22页 |
1.2.1 SE感染的研究进展 | 第15-17页 |
1.2.2 自噬的研究进展 | 第17-20页 |
1.2.3 沙门氏菌感染与自噬概述 | 第20-21页 |
1.2.4 Fe_3O_4-MNP应用概述 | 第21-22页 |
1.3 研究内容 | 第22页 |
1.4 技术路线 | 第22-23页 |
第二章 肠炎沙门氏菌感染诱导LMH细胞自噬的研究 | 第23-33页 |
2.1 材料与方法 | 第23-28页 |
2.1.1 菌株和细胞株 | 第23页 |
2.1.2 主要试剂 | 第23页 |
2.1.3 主要仪器 | 第23-24页 |
2.1.4 主要试剂的配制 | 第24页 |
2.1.5 试验设计 | 第24-25页 |
2.1.6 LMH细胞培养 | 第25页 |
2.1.7 SC070的培养和定量 | 第25页 |
2.1.8 感染剂量和共培养时间的确定 | 第25-26页 |
2.1.9 细胞感染模型的建立 | 第26页 |
2.1.10 WB检测自噬蛋白LC3和p62表达情况 | 第26-28页 |
2.1.11 TEM观察自噬结构 | 第28页 |
2.1.12 数据处理 | 第28页 |
2.2 结果与分析 | 第28-31页 |
2.2.1 感染剂量和共培养时间的确定 | 第28-29页 |
2.2.2 自噬蛋白LC3和p62的表达情况 | 第29-30页 |
2.2.3 TEM观察自噬结构 | 第30-31页 |
2.3 讨论 | 第31-32页 |
2.4 小结 | 第32-33页 |
第三章 Fe_3O_4-MNP在肠炎沙门氏菌感染中的作用 | 第33-40页 |
3.1 材料与方法 | 第33-35页 |
3.1.1 菌株和细胞株 | 第33页 |
3.1.2 主要试剂 | 第33页 |
3.1.3 主要仪器 | 第33页 |
3.1.4 主要试剂的配制 | 第33页 |
3.1.5 试验设计 | 第33页 |
3.1.6 LMH细胞培养 | 第33页 |
3.1.7 SC070的培养和定量 | 第33-34页 |
3.1.8 Fe_3O_4-MNP共培养对胞内菌数量的影响 | 第34页 |
3.1.9 Fe_3O_4-MNP共培养对SE感染细胞活性的影响 | 第34-35页 |
3.1.10 数据处理 | 第35页 |
3.2 结果与分析 | 第35-38页 |
3.2.1 Fe_3O_4-MNP的理化特性 | 第35页 |
3.2.2 Fe_3O_4-MNP共培养对胞内菌数量的影响 | 第35-36页 |
3.2.3 Fe_3O_4-MNP共培养对SE感染细胞活性的影响 | 第36-38页 |
3.3 讨论 | 第38-39页 |
3.4 小结 | 第39-40页 |
第四章 Fe_3O_4-MNP干扰肠炎沙门氏菌感染细胞自噬的研究 | 第40-44页 |
4.1 材料与方法 | 第40-41页 |
4.1.1 菌株和细胞株 | 第40页 |
4.1.2 主要试剂 | 第40页 |
4.1.3 主要仪器 | 第40页 |
4.1.4 主要试剂的配制 | 第40页 |
4.1.5 试验设计 | 第40页 |
4.1.6 LMH细胞培养 | 第40页 |
4.1.7 SC070的培养和定量 | 第40页 |
4.1.8 Fe_3O_4-MNP共培养 | 第40-41页 |
4.1.9 自噬蛋白LC3和p62的检测 | 第41页 |
4.1.10 TEM观察自噬结构 | 第41页 |
4.1.11 数据处理 | 第41页 |
4.2 结果与分析 | 第41-42页 |
4.2.1 Fe_3O_4-MNP共培养对SE感染细胞LC3、p62蛋白表达的影响 | 第41-42页 |
4.2.2 TEM观察自噬结构 | 第42页 |
4.3 讨论 | 第42-43页 |
4.4 小结 | 第43-44页 |
第五章 全文结论 | 第44-45页 |
5.1 本研究的主要结论 | 第44页 |
5.2 研究的主要创新点 | 第44页 |
5.3 待进一步研究的问题 | 第44-45页 |
参考文献 | 第45-51页 |
致谢 | 第51-52页 |
作者简历 | 第52页 |