中文摘要 | 第4-6页 |
Abstract | 第6-8页 |
符号说明 | 第11-13页 |
前言 | 第13-15页 |
研究现状、成果 | 第13-14页 |
研究目的、方法 | 第14-15页 |
1.对象与方法 | 第15-23页 |
1.1 研究对象 | 第15页 |
1.2 实验材料 | 第15-17页 |
1.2.1 主要试剂 | 第15-16页 |
1.2.2 所有试剂的配置方法 | 第16-17页 |
1.2.3 实验室相关仪器和分析软件 | 第17页 |
1.2.4 实验室耗材 | 第17页 |
1.3 实验方法 | 第17-23页 |
1.3.1 COLO-16细胞的培养 | 第17-20页 |
1.3.1.1 细胞复苏 | 第17-18页 |
1.3.1.2 细胞传代 | 第18页 |
1.3.1.3 细胞冻存 | 第18-19页 |
1.3.1.4 细胞种板 | 第19-20页 |
1.3.2 蛋白样品提取 | 第20页 |
1.3.3 蛋白定量 | 第20页 |
1.3.4 western印迹 | 第20-21页 |
1.3.5 自噬体AO染色 | 第21-22页 |
1.3.6 乳酸脱氢酶(LDH)释放实验 | 第22页 |
1.3.7 Annexin V-EGFP细胞凋亡检测实验 | 第22-23页 |
1.4 统计学处理 | 第23页 |
2.结果 | 第23-33页 |
2.1 不同浓度的依维莫司对COLO-16细胞的自噬调控 | 第23-26页 |
2.2 依维莫司对自噬、凋亡等有关的关键信号通路的调控效应 | 第26-28页 |
2.2.1 MTOR信号通路对依维莫司处理敏感 | 第26页 |
2.2.2 细胞凋亡通路、Akt通路对依维莫司不敏感 | 第26-28页 |
2.3 依维莫司对顺铂诱导细胞死亡协同效应的分析 | 第28-33页 |
2.3.1 依维莫司能增强顺铂诱导的细胞死亡 | 第28-29页 |
2.3.2 依维莫司不影响顺铂诱导的COLO-16细胞凋亡 | 第29-32页 |
2.3.3 顺铂处理细胞时,依维莫司能抑制Chk1的激活 | 第32页 |
2.3.4 依维莫司抑制顺铂处理产生的COLO-16细胞Rictor激活 | 第32-33页 |
3.讨论 | 第33-36页 |
结论 | 第36-37页 |
参考文献 | 第37-44页 |
发表论文及参加科研情况说明 | 第44-45页 |
综述 | 第45-56页 |
综述参考文献 | 第52-56页 |
致谢 | 第56-58页 |
个人简历 | 第58页 |