| 中文摘要 | 第4-8页 |
| Abstract | 第8-10页 |
| 缩略语/符号说明 | 第14-17页 |
| 前言 | 第17-21页 |
| 研究现状、成果 | 第17-18页 |
| 研究目的、方法 | 第18-21页 |
| 一、子痫前期样小鼠模型建立和评价 | 第21-69页 |
| 1.1 对象和方法 | 第21-47页 |
| 1.1.1 实验对象 | 第21页 |
| 1.1.2 实验分组与技术路线 | 第21-22页 |
| 1.1.3 主要仪器和耗材 | 第22-24页 |
| 1.1.4 主要实验试剂 | 第24-25页 |
| 1.1.5 主要溶液配制 | 第25-27页 |
| 1.1.6 观察雌鼠发情周期 | 第27-28页 |
| 1.1.7 小鼠无创鼠尾血压监测 | 第28-30页 |
| 1.1.8 小动物高分辨率超声检测 | 第30-33页 |
| 1.1.9 实验动物标本采集 | 第33-34页 |
| 1.1.10 24 小时尿蛋白的测定 | 第34-36页 |
| 1.1.11 胎盘组织HE染色 | 第36-38页 |
| 1.1.12 肾脏组织HE染色 | 第38-39页 |
| 1.1.13 流式细胞术检测细胞亚群分型 | 第39-42页 |
| 1.1.14 Real-time PCR法检测蜕膜巨噬细胞表型标志物基因表达量 | 第42-47页 |
| 1.1.15 统计学分析 | 第47页 |
| 1.2 结果 | 第47-65页 |
| 1.2.1 无创性血压监测与24小时蛋白尿 | 第47-48页 |
| 1.2.2 肾脏、胎盘结构性改变和胎鼠、胎盘生长发育情况 | 第48-51页 |
| 1.2.3 动脉搏动指数与阻力指数 | 第51-52页 |
| 1.2.4 股动脉血流介导的血管舒张功能 | 第52页 |
| 1.2.5 超声学指标评价子痫前期样小鼠模型的应用价值 | 第52-57页 |
| 1.2.6 外周血、组织中单核/巨噬细胞亚群的影响 | 第57-62页 |
| 1.2.7 蜕膜组织巨噬细胞表型标志物的变化 | 第62-65页 |
| 1.3 讨论 | 第65-67页 |
| 1.4 小结 | 第67-69页 |
| 二、LC对子痫前期样小鼠围产期临床表现与妊娠结局的影响 | 第69-123页 |
| 2.1 对象和方法 | 第69-88页 |
| 2.1.1 实验对象 | 第69-70页 |
| 2.1.2 实验分组与技术路线 | 第70-72页 |
| 2.1.3 主要仪器和耗材 | 第72-74页 |
| 2.1.4 主要实验试剂 | 第74-76页 |
| 2.1.5 主要溶液配制 | 第76-79页 |
| 2.1.6 观察雌鼠发情周期 | 第79页 |
| 2.1.7 小鼠无创鼠尾血压监测 | 第79页 |
| 2.1.8 小动物高分辨率超声检测 | 第79页 |
| 2.1.9 实验动物标本采集 | 第79-80页 |
| 2.1.10 24 小时尿蛋白的测定 | 第80页 |
| 2.1.11 胎盘组织HE染色 | 第80页 |
| 2.1.12 肾脏组织HE染色 | 第80页 |
| 2.1.13 流式细胞术检测细胞亚群分型 | 第80-81页 |
| 2.1.14 Real-time PCR法检测蜕膜巨噬细胞表型标志物基因表达量 | 第81页 |
| 2.1.15 酶联免疫吸附测定（Enzyme Linked Immunosorbent Assay, ELISA）检测小鼠血浆IL-1β、TNF-α、IL-6 水平 | 第81-82页 |
| 2.1.16 小鼠RAW264.7 细胞系培养方法 | 第82-83页 |
| 2.1.17 最佳药物浓度的确定 | 第83-84页 |
| 2.1.18 药物最佳干预时间的确定 | 第84-85页 |
| 2.1.19 Real-time PCR检测LC对小鼠RAW264.7 细胞系表型偏移的影响 | 第85-86页 |
| 2.1.20 Western blot检测各组细胞PPAR-γ、pStat6/Stat6蛋白表达水平 | 第86-87页 |
| 2.1.21 统计学分析 | 第87-88页 |
| 2.2 结果 | 第88-119页 |
| 2.2.1 LC对子痫前期样小鼠血压、24 小时尿蛋白的影响 | 第88-89页 |
| 2.2.2 LC对胎鼠、胎盘生长发育的影响 | 第89-93页 |
| 2.2.3 LC对子痫前期样小鼠肾脏、胎盘结构的影响 | 第93-94页 |
| 2.2.4 LC对子痫前期样小鼠血管功能的影响 | 第94-101页 |
| 2.2.5 血浆IL-1β、TNF-α、IL-6 表达水平 | 第101-102页 |
| 2.2.6 LC对子痫前期样小鼠外周血、组织中单核/巨噬细胞亚群的影响 | 第102-106页 |
| 2.2.7 组织巨噬细胞M2表型与血压、蛋白尿、胎鼠/胎盘生长发育情况的相关性 | 第106-109页 |
| 2.2.8 LC对蜕膜组织巨噬细胞表型标志物基因表达水平的影响 | 第109-112页 |
| 2.2.9 RAW264.7 细胞系药物最佳干预浓度 | 第112-113页 |
| 2.2.10 RAW264.7 细胞系药物最佳干预时间 | 第113-114页 |
| 2.2.11 PPAR-γ 在LC调节巨噬细胞表型偏移中的作用 | 第114-118页 |
| 2.2.12 LC对各组细胞Stat6信号通路相关蛋白pStat6/Stat6表达水平的影响 | 第118-119页 |
| 2.3 讨论 | 第119-121页 |
| 2.4 小结 | 第121-123页 |
| 三、围产期LC肠道代谢产物对动脉粥样硬化的影响 | 第123-161页 |
| 3.1 对象和方法 | 第123-136页 |
| 3.1.1 实验对象 | 第123页 |
| 3.1.2 实验分组与技术路线 | 第123-124页 |
| 3.1.3 主要仪器和耗材 | 第124-126页 |
| 3.1.4 主要实验试剂 | 第126-127页 |
| 3.1.5 主要溶液配制 | 第127-129页 |
| 3.1.6 实验动物标本采集 | 第129-130页 |
| 3.1.7 Real-time PCR法检测肝脏组织FMO基因表达量 | 第130-131页 |
| 3.1.8 ELISA检测小鼠血浆TC、TG和ox-LDL水平 | 第131页 |
| 3.1.9 主动脉瓣、主动脉及其主要分支动脉粥样硬化斑块的检测 | 第131-132页 |
| 3.1.10 高效液相质谱检测血浆TMAO | 第132-133页 |
| 3.1.11 粪便微生物 16S rDNA高通量检测 | 第133-136页 |
| 3.2 结果 | 第136-157页 |
| 3.2.1 血浆TC、TG、ox-LDL表达水平 | 第136页 |
| 3.2.2 主动脉瓣、主动脉及其主要分支油红O染色 | 第136-138页 |
| 3.2.3 LC对血浆TMAO的影响 | 第138-139页 |
| 3.2.4 肝组织FMO3表达水平 | 第139-140页 |
| 3.2.5 小鼠粪便微生物 16S rDNA测序分析 | 第140-157页 |
| 3.3 讨论 | 第157-158页 |
| 3.4 小结 | 第158-161页 |
| 全文结论 | 第161-163页 |
| 论文创新点 | 第163-165页 |
| 论文局限性 | 第165-167页 |
| 参考文献 | 第167-181页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第181-183页 |
| 综述 妊娠与免疫细胞 | 第183-201页 |
| 综述参考文献 | 第190-201页 |
| 致谢 | 第201-203页 |
| 个人简历 | 第203页 |
