| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 主要符号对照表 | 第11-12页 |
| 第1章 引言 | 第12-22页 |
| 1.1 阿尔兹海默症 | 第12页 |
| 1.2 阿尔兹海默症发病机制的研究进展 | 第12-15页 |
| 1.2.1 胆碱能学说 | 第12-13页 |
| 1.2.2 β 淀粉样蛋白 | 第13页 |
| 1.2.3 微管相关蛋白功能异常学说 | 第13-14页 |
| 1.2.4 氧化应激学说 | 第14页 |
| 1.2.5 炎症机制学 | 第14页 |
| 1.2.6 其他学说 | 第14-15页 |
| 1.3 阿尔茨海默症的药物治疗及新药研发 | 第15-18页 |
| 1.3.1 抗炎治疗 | 第15页 |
| 1.3.2 谷氨酸受体拮抗剂 | 第15页 |
| 1.3.3 乙酰胆碱酯酶抑制剂 | 第15页 |
| 1.3.4 β 淀粉样蛋白靶向药物 | 第15-16页 |
| 1.3.5 雌激素治疗 | 第16页 |
| 1.3.6 选择性雌激素受体调节剂 | 第16-18页 |
| 1.4 SERMs的神经保护作用和作用机制 | 第18-19页 |
| 1.4.1 SERMs的神经保护作用 | 第18页 |
| 1.4.2 SERMs的作用机制 | 第18-19页 |
| 1.5 Aβ_(1-42)损伤模型建立 | 第19-20页 |
| 1.5.1 β 淀粉样蛋白 | 第19页 |
| 1.5.2 大鼠肾上腺嗜铬细胞瘤细胞（PC12） | 第19-20页 |
| 1.6 细胞凋亡 | 第20页 |
| 1.6.1 细胞凋亡的特征 | 第20页 |
| 1.7 本课题的研究目的及意义 | 第20-22页 |
| 第2章 PC12细胞向神经细胞的诱导分化 | 第22-40页 |
| 2.1 实验材料 | 第22-25页 |
| 2.1.1 研究对象 | 第22页 |
| 2.1.2 主要实验试剂 | 第22-23页 |
| 2.1.3 主要仪器和设备 | 第23-24页 |
| 2.1.4 主要试剂配制 | 第24-25页 |
| 2.2 实验方法 | 第25-34页 |
| 2.2.1 细胞的形态学观察 | 第25-27页 |
| 2.2.2 qPCR检测细胞神经标志物基因水平的变化 | 第27-29页 |
| 2.2.3 Western blot检测细胞MAP2蛋白表达的变化 | 第29-34页 |
| 2.2.4 统计学处理 | 第34页 |
| 2.3 实验结果 | 第34-37页 |
| 2.3.1 NGF对PC12细胞形态的影响 | 第34-35页 |
| 2.3.2 NGF对PC12细胞神经标志物基因水平的影响 | 第35-37页 |
| 2.3.3 NGF对PC12细胞MAP2蛋白表达的影响 | 第37页 |
| 2.4 讨论 | 第37-38页 |
| 2.5 小结 | 第38-40页 |
| 第3章 Aβ_(1-42)对神经细胞凋亡和线粒体功能的影响 | 第40-52页 |
| 3.1 实验材料 | 第40-43页 |
| 3.1.1 研究对象 | 第40页 |
| 3.1.2 主要实验试剂 | 第40-41页 |
| 3.1.3 主要仪器和设备 | 第41-42页 |
| 3.1.4 主要试剂配制 | 第42-43页 |
| 3.2 实验方法 | 第43-45页 |
| 3.2.1 CCK8法检测细胞活力 | 第43页 |
| 3.2.2 细胞的形态学观察 | 第43页 |
| 3.2.3 JC-1 荧光染色法检测细胞线粒体膜电位 | 第43-44页 |
| 3.2.4 Western blot印迹法检测Bax、Bcl-2 蛋白的表达 | 第44页 |
| 3.2.5 统计学处理 | 第44-45页 |
| 3.3 实验结果 | 第45-49页 |
| 3.3.1 Aβ_(1-42)对神经细胞增殖能力的影响 | 第45-46页 |
| 3.3.2 Aβ_(1-42)对神经细胞形态的影响 | 第46-47页 |
| 3.3.3 Aβ_(1-42)对神经细胞线粒膜电位的影响 | 第47-48页 |
| 3.3.4 Aβ_(1-42)对神经细胞凋亡蛋白Bax、Bcl-2 的影响 | 第48-49页 |
| 3.4 讨论 | 第49-50页 |
| 3.5 小结 | 第50-52页 |
| 第4章 他莫昔芬对神经细胞的保护作用 | 第52-64页 |
| 4.1 实验材料 | 第52-54页 |
| 4.1.1 研究对象 | 第52页 |
| 4.1.2 主要实验试剂 | 第52-53页 |
| 4.1.3 主要仪器和设备 | 第53-54页 |
| 4.1.4 主要试剂配制 | 第54页 |
| 4.2 实验方法 | 第54-57页 |
| 4.2.1 CCK8法检测细胞活力 | 第54-55页 |
| 4.2.2 Hoechst33258染色检测细胞核凋亡 | 第55页 |
| 4.2.3 JC-1 染色法检测细胞线粒体膜电位的变化 | 第55-56页 |
| 4.2.4 Western blot印迹法检测Bax、Bcl-2 蛋白的表达 | 第56-57页 |
| 4.2.5 统计学处理 | 第57页 |
| 4.3 实验结果 | 第57-61页 |
| 4.3.1 TAM对细胞活力的影响 | 第57-58页 |
| 4.3.2 TAM对细胞核的影响 | 第58-60页 |
| 4.3.3 TAM对细胞线粒体膜电位的影响 | 第60页 |
| 4.3.4 TAM对细胞凋亡蛋白Bax、Bcl-2 的影响 | 第60-61页 |
| 4.4 讨论 | 第61-62页 |
| 4.5 小结 | 第62-64页 |
| 第5章 总结与展望 | 第64-66页 |
| 5.1 总结 | 第64-65页 |
| 5.1.1 PC12细胞向神经细胞的诱导分化 | 第64页 |
| 5.1.2 Aβ_(1-42)对神经细胞凋亡和线粒体功能的影响 | 第64页 |
| 5.1.3 TAM对神经细胞的保护作用 | 第64-65页 |
| 5.2 展望 | 第65-66页 |
| 参考文献 | 第66-70页 |
| 致谢 | 第70-72页 |
| 个人简历 | 第72页 |
