| 摘要 | 第1-10页 |
| Abstract | 第10-12页 |
| 缩写词 | 第12-13页 |
| 第一章 前言 | 第13-17页 |
| 1 蛋白质组与植物蛋白组学 | 第13-14页 |
| 2 植物盐胁迫蛋白质组学研究 | 第14页 |
| 3 盐胁迫对植物生长及抗氧化酶活性的影响的研究进展 | 第14-15页 |
| 4 红麻盐胁迫的研究进展 | 第15-16页 |
| 5 本研究的目的和意义 | 第16-17页 |
| 第二章 红麻叶片蛋白质双向电泳体系的建立与优化 | 第17-28页 |
| 1 材料与方法 | 第17-20页 |
| · | 第17页 |
| ·供试材料 | 第17页 |
| ·实验主要仪器与试剂 | 第17页 |
| ·实验方法 | 第17-20页 |
| ·蛋白样品的制备 | 第17-18页 |
| ·蛋白质定量 | 第18-19页 |
| ·SDS-PAGE 单向电泳 | 第19页 |
| ·双向电泳 | 第19-20页 |
| 2 结果与分析 | 第20-25页 |
| ·蛋白质含量标准曲线 | 第20页 |
| ·适合红麻双向电泳体系的蛋白质提取方法 | 第20-23页 |
| ·三种蛋白提取方法的提取效果比较 | 第20-21页 |
| ·不同蛋白提取方法的单向 SDS-PAGE 和双向电泳图谱的效果比较 | 第21-23页 |
| ·红麻蛋白组双向电泳技术体系建立与优化 | 第23-25页 |
| ·IPG 干胶条pH 范围的选择 | 第23页 |
| ·上样方式的选择 | 第23-24页 |
| ·上样量的优化 | 第24页 |
| ·分离胶浓度的优化 | 第24-25页 |
| 3 讨论 | 第25-28页 |
| ·关于红麻蛋白质样品制备 | 第25-26页 |
| ·关于红麻蛋白质双向电泳体系建立与优化 | 第26-28页 |
| 第三章 盐胁迫下红麻叶片差异蛋白质组学分析 | 第28-43页 |
| 1 材料与方法 | 第28-29页 |
| ·供试材料 | 第28页 |
| ·实验方法 | 第28-29页 |
| ·蛋白提取及双向电泳 | 第28页 |
| ·差异蛋白质点的酶解 | 第28页 |
| ·差异蛋白质谱分析及数据库检索鉴定 | 第28-29页 |
| 2 结果与分析 | 第29-37页 |
| ·双向电泳图谱及其分析 | 第29页 |
| ·差异蛋白点的质谱鉴定及其功能分类 | 第29-34页 |
| ·差异蛋白质的相对表达量变化分析 | 第34-36页 |
| ·红麻应对盐胁迫过程中的下调蛋白 | 第36页 |
| ·红麻应对盐胁迫过程中的上调蛋白 | 第36-37页 |
| 3 讨论 | 第37-43页 |
| ·能量和物质代谢 | 第37-38页 |
| ·蛋白质代谢 | 第38-39页 |
| ·光合作用 | 第39页 |
| ·清除活性氧和防御 | 第39-41页 |
| ·运输 | 第41页 |
| ·辅酶代谢 | 第41-43页 |
| 第四章 盐胁迫对红麻幼苗生长及抗氧化酶活性的影响 | 第43-52页 |
| 1 材料与方法 | 第43-45页 |
| ·材料培养及盐胁迫处理 | 第43-44页 |
| ·鲜重及根茎长的测定 | 第44页 |
| ·MDA 和 H_20_2 含量的测定 | 第44-45页 |
| ·抗氧化酶活性的测定 | 第45页 |
| ·统计分析 | 第45页 |
| 2 结果与分析 | 第45-50页 |
| ·不同条件盐胁迫对红麻幼苗生长的影响 | 第45-46页 |
| ·不同条件盐胁迫对红麻叶片 MDA 和 H_2O_2 含量的影响 | 第46-48页 |
| ·不同条件盐胁迫对红麻叶片 SOD、POD、CAT 和 GR 活性的影响 | 第48-50页 |
| 3 讨论 | 第50-52页 |
| ·盐胁迫对红麻幼苗生长的影响 | 第50页 |
| ·盐胁迫对红麻幼苗叶片 MDA 和 H_2O_2 含量的影响 | 第50页 |
| ·盐胁迫对红麻幼苗叶片 SOD、POD、CAT 和 GR 活性的影响 | 第50-52页 |
| 展望 | 第52-53页 |
| 参考文献 | 第53-62页 |
| 附图 | 第62-66页 |
| 感谢 | 第66页 |
