低分子量壳聚糖的制备表征及抑制黄曲霉菌活性
摘要 | 第1-7页 |
ABSTRACT | 第7-9页 |
1 绪论 | 第9-16页 |
·壳聚糖 | 第9-10页 |
·低分子量壳聚糖的制备进展 | 第10-12页 |
·化学降解法 | 第10-11页 |
·物理降解法 | 第11页 |
·生物法 | 第11-12页 |
·其他方法 | 第12页 |
·低分子量壳聚糖抑菌活性研究进展 | 第12-13页 |
·低分子量壳聚糖对细菌抑制研究 | 第13页 |
·低分子量壳聚糖对真菌抑制研究 | 第13页 |
·影响低分子量壳聚糖的抑菌因素 | 第13-15页 |
·低分子量壳聚糖浓度 | 第13-14页 |
·低分子量壳聚糖平均分子量 | 第14页 |
·低分子量壳聚糖脱乙酰度 | 第14页 |
·菌种种类及菌种生长阶段 | 第14页 |
·低分子量壳聚糖的化学改性 | 第14-15页 |
·黄曲霉菌抑制剂研究进展 | 第15页 |
·本研究的设计思路及主要研究内容 | 第15-16页 |
2 低分子量壳聚糖的制备及表征分析 | 第16-31页 |
·实验原料、试剂及仪器设备 | 第16页 |
·实验原料、试剂 | 第16页 |
·仪器设备 | 第16页 |
·低分子量壳聚糖的制备 | 第16-17页 |
·低分子量壳聚糖平均分子质量的测定 | 第17-18页 |
·溶液制备 | 第17页 |
·标准曲线的绘制 | 第17页 |
·样品平均分子质量测定 | 第17-18页 |
·低分子量壳聚糖表征分析 | 第18-19页 |
·红外光谱分析 | 第18页 |
·脱乙酰度 | 第18-19页 |
·热重分析 | 第19页 |
·低分子量壳聚糖水分的测定 | 第19页 |
·结果与分析 | 第19-30页 |
·H_2O_2氧化时间对壳聚糖降解的影响 | 第19-20页 |
·H_2O_2浓度对壳聚糖降解的影响 | 第20-21页 |
·超声波作用时间对壳聚糖降解的影响 | 第21页 |
·微波作用时间对壳聚糖降解的影响 | 第21-22页 |
·微波功率对壳聚糖降解的影响 | 第22-23页 |
·超声-微波作用时间对壳聚糖降解的影响 | 第23-24页 |
·不同降解方式对壳聚糖降解效率的影响 | 第24-25页 |
·低分子量壳聚糖制备方法正交实验结果分析 | 第25-26页 |
·降解前后壳聚糖分子量与脱乙酰度比较 | 第26-27页 |
·低分子量壳聚糖红外光谱分析 | 第27-28页 |
·热重分析 | 第28-29页 |
·水分测定 | 第29-30页 |
·小结 | 第30-31页 |
3 低分子量壳聚糖抑菌活性与影响因素研究 | 第31-37页 |
·材料、试剂及仪器设备 | 第31页 |
·材料、试剂 | 第31页 |
·仪器设备 | 第31页 |
·菌种的活化与孢子悬液的制备 | 第31页 |
·低分子量壳聚糖抑菌活性及MIC测定 | 第31-32页 |
·低分子量壳聚糖对黄曲霉形态的影响试验 | 第32页 |
·黄曲霉生长曲线与低分子量壳聚糖的抑菌曲线测定 | 第32页 |
·结果与分析 | 第32-36页 |
·低分子量壳聚糖抑制黄曲霉菌活性 | 第32-34页 |
·低分子量壳聚糖对黄曲霉菌微观形态影响 | 第34-35页 |
·黄曲霉菌生长曲线及抑制曲线 | 第35-36页 |
·小结 | 第36-37页 |
4 结论与展望 | 第37-38页 |
·结论 | 第37页 |
·展望 | 第37-38页 |
参考文献 | 第38-43页 |
致谢 | 第43-44页 |
攻读学位期间发表的学术论文目录 | 第44页 |