| 中文摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-10页 |
| 英文缩略词表 | 第10-11页 |
| 第一章 绪论 | 第11-31页 |
| ·萜类化合物(TERPENOIDS)简介 | 第11-22页 |
| ·萜类化合物类别 | 第11-12页 |
| ·萜类化合物生理生态学作用研究概况 | 第12-13页 |
| ·萜类化合物的生物合成途径 | 第13-16页 |
| ·1-脱氧-D-木酮糖-5-磷酸合酶(DXS)研究概况 | 第16-20页 |
| ·磷酸丙糖异构酶(TPI)研究概况 | 第20-22页 |
| ·常用化学衍生方法简介 | 第22-29页 |
| ·硅烷基化法(silylation) | 第23-25页 |
| ·烷基化(alkylation)反应 | 第25-27页 |
| ·酰基化(acylation)反应 | 第27-29页 |
| ·本课题研究的意义 | 第29-31页 |
| 第二章 ECDXS的诱导表达及其酶活性检测 | 第31-42页 |
| ·实验材料与仪器 | 第31-32页 |
| ·菌株 | 第31页 |
| ·实验试剂 | 第31-32页 |
| ·实验仪器 | 第32页 |
| ·实验方法 | 第32-38页 |
| ·实验中主要溶液的配方 | 第32-34页 |
| ·目的蛋白EcDXS的诱导表达 | 第34页 |
| ·亲和层析制备EcDXS | 第34-35页 |
| ·纯化产物的SDS-PAGE检测 | 第35页 |
| ·DXS浓度测定 | 第35-36页 |
| ·DXS活性检测 | 第36-38页 |
| ·实验结果及讨论 | 第38-40页 |
| ·重组蛋白DXS的亲和层析纯化结果 | 第38页 |
| ·重组蛋白DXS的浓度测定结果 | 第38-39页 |
| ·纸色谱测定DXS酶的合成活性结果 | 第39页 |
| ·柱前衍生-HPLC检测DXS磷酸丙糖异构化活性 | 第39-40页 |
| ·本章小结 | 第40-42页 |
| 第三章 丹皮酚及其衍生物对DXS异构化活性的影响 | 第42-51页 |
| ·实验试剂和仪器 | 第42-43页 |
| ·试剂 | 第42-43页 |
| ·仪器 | 第43页 |
| ·实验方法 | 第43-46页 |
| ·D-甘油醛-3-磷酸的合成 | 第43-45页 |
| ·助溶剂对反应体系的影响 | 第45页 |
| ·丹皮酚及其衍生物对DXS异构化活性的抑制 | 第45-46页 |
| ·D-GAP的回收率实验 | 第46页 |
| ·实验结果及分析 | 第46-50页 |
| ·D-GAP的1H-NMR结果 | 第46页 |
| ·D-GAP的纯度检测结果 | 第46-47页 |
| ·助溶剂对反应体系的影响 | 第47-48页 |
| ·对化合物本底吸收的考察结果 | 第48页 |
| ·丹皮酚及其衍生物对DXS异构化活性的抑制结果 | 第48-49页 |
| ·D-GAP的回收率实验结果 | 第49-50页 |
| ·本章小结 | 第50-51页 |
| 第四章 硅烷化法研究DXS异构化机理 | 第51-64页 |
| ·实验材料 | 第52页 |
| ·主要试剂 | 第52页 |
| ·主要仪器 | 第52页 |
| ·实验方法 | 第52-57页 |
| ·溶液的配制 | 第52-53页 |
| ·柱前衍生-HPLC法优化DXS催化磷酸丙糖异构化时间 | 第53-54页 |
| ·优化D-GAP/DHAP硅烷化反应的条件 | 第54-55页 |
| ·D-GAP的异构化样品的硅烷化 | 第55-56页 |
| ·异构化样品的LC-MS分析 | 第56-57页 |
| ·实验结果及讨论 | 第57-62页 |
| ·柱前衍生-HPLC法优化DXS催化磷酸丙糖异构化时间 | 第57-58页 |
| ·时间对硅烷化反应的考察结果 | 第58页 |
| ·温度对硅烷化反应的考察结果 | 第58-59页 |
| ·GC-MS分析DXS催化异构化的结果 | 第59-60页 |
| ·DHA和D-GA硅烷化反应结果 | 第60-61页 |
| ·LC-MS分析DXS催化异构化的结果 | 第61-62页 |
| ·本章小结 | 第62-64页 |
| 总结 | 第64-66页 |
| 参考文献 | 第66-74页 |
| 附录 | 第74-79页 |
| 致谢 | 第79页 |
