| 摘要 | 第1-4页 |
| Abstract | 第4-9页 |
| 文献综述 | 第9-18页 |
| 1 引言 | 第18-20页 |
| ·研究价值和意义 | 第18页 |
| ·本研究解决的问题 | 第18-19页 |
| ·主要技术路线 | 第19-20页 |
| 2 实验材料与方法 | 第20-31页 |
| ·实验材料 | 第20-22页 |
| ·菌种与载体 | 第20页 |
| ·培养基 | 第20页 |
| ·主要工具酶和试剂盒 | 第20页 |
| ·标准参照物 | 第20页 |
| ·相关试剂 | 第20页 |
| ·试剂的配制 | 第20-22页 |
| ·仪器与设备 | 第22页 |
| ·实验方法 | 第22-31页 |
| ·菌株活化与鉴定 | 第22-23页 |
| ·ZJCN121 菌株所产岩藻多糖酶分子量 | 第23页 |
| ·ZJCN121 菌株基因组 DNA 的提取（CTAB/NaCl 法） | 第23-24页 |
| ·ZJCN121 基因组 DNA 的酶切 | 第24-26页 |
| ·基因组 DNA 酶切的基因组 DNA 样品量的优化 | 第24页 |
| ·ZJCN121 基因组 DNA 酶切的作用时间的优化 | 第24-25页 |
| ·ZJCN121 基因组 DNA 酶切的酶量的优化 | 第25页 |
| ·样品琼脂糖凝胶电泳 | 第25页 |
| ·ZJCN121 基因组 DNA 片段的回收 | 第25-26页 |
| ·质粒载体的制备 | 第26-27页 |
| ·质粒 pET-32a 的快速抽提 | 第26-27页 |
| ·质粒 pET-32a 的酶切 | 第27页 |
| ·质粒 pET-32a 酶切产物的去磷酸化 | 第27页 |
| ·质粒 pET-32a 酶切片段的回收 | 第27页 |
| ·基因组文库的构建 | 第27-28页 |
| ·酶切片段的链接 | 第27-28页 |
| ·感受态细胞的制备 | 第28页 |
| ·连接产物转化感受态细胞 | 第28页 |
| ·文库的鉴定 | 第28-29页 |
| ·文库稳定性的鉴定 | 第28-29页 |
| ·文库插入片段大小的检测 | 第29页 |
| ·岩藻多糖酶基因的筛选 | 第29-31页 |
| ·阳性克隆子的筛选 | 第29页 |
| ·阳性克隆子的酶切鉴定 | 第29页 |
| ·阳性克隆子产物的电泳鉴 | 第29页 |
| ·产酶曲线的绘制 | 第29-30页 |
| ·测序与分析 | 第30-31页 |
| 3 结果与分析 | 第31-43页 |
| ·ZJCN121 菌株的活化 | 第31页 |
| ·ZJCN121 菌株所产岩藻多糖酶分子量 | 第31-32页 |
| ·ZJCN121 菌株基因组 DNA 的提取 | 第32-33页 |
| ·ZJCN121 菌株基因组 DNA 的酶切 | 第33-35页 |
| ·pET-32a 载体的制备 | 第35页 |
| ·ZJCN121 菌株基因组文库的构建与鉴定 | 第35-36页 |
| ·阳性克隆子的筛选 | 第36-37页 |
| ·阳性克隆子的酶切鉴定和蛋白质电泳检测 | 第37页 |
| ·阳性克隆子产酶曲线的绘制 | 第37-38页 |
| ·阳性克隆子的测序与分析 | 第38-43页 |
| 4 讨论 | 第43-45页 |
| 5 结论 | 第45-46页 |
| 参考文献 | 第46-53页 |
| 致谢 | 第53-54页 |
| 作者简介 | 第54页 |
| 在读期间发表的学术论文 | 第54页 |
