| 摘要 | 第1-7页 |
| ABSTRACT | 第7-14页 |
| 1. 引言 | 第14-18页 |
| 2. 实验材料 | 第18-24页 |
| ·实验动物 | 第18页 |
| ·阿加曲班 | 第18页 |
| ·主要生化试剂 | 第18-19页 |
| ·实验主要使用仪器设备 | 第19页 |
| ·实验主要试剂的配制方法 | 第19-24页 |
| 3. 实验方法 | 第24-32页 |
| ·大鼠脑出血模型的建立及阿加曲班的干预方法 | 第24页 |
| ·建模后大鼠的神经功能观察方法 | 第24页 |
| ·建模后大鼠的 BBB 通透性 | 第24-25页 |
| ·建模后大鼠的脑水含量(BWC)测定 | 第25页 |
| ·建模后大鼠的脑组织摘除 | 第25页 |
| ·内参及 iNOS 的引物设计与合成 | 第25页 |
| ·脑出血大鼠血肿周围组织总 RNA 提取 | 第25-26页 |
| ·RNA 逆转录 cDNA | 第26-27页 |
| ·PCR 扩增反应及半定量分析 | 第27-28页 |
| ·大鼠模型脑血肿周围脑组织蛋白的提取 | 第28页 |
| ·大鼠模型脑血肿周围脑组织蛋白的 Western blotting 方法 | 第28-30页 |
| ·统计学分析 | 第30-32页 |
| 4. 实验结果 | 第32-40页 |
| ·大鼠脑出血建模后神经功能评分 | 第32-33页 |
| ·大鼠脑出血建模后脑水含量测定 | 第33页 |
| ·大鼠脑出血建模后脑组织 EB 含量的变化 | 第33-34页 |
| ·RNA 的提取结果 | 第34-35页 |
| ·cDNA 质量的检验 | 第35-36页 |
| ·大鼠脑出血模型 iNOS 基因的 mRNA 转录水平 | 第36-37页 |
| ·蛋白含量和纯度分析 | 第37页 |
| ·Western blotting 结果 | 第37-40页 |
| 5. 讨论 | 第40-46页 |
| ·选择大鼠作为建立脑出血模型的动物 | 第40页 |
| ·凝血酶在脑出血后的作用 | 第40-42页 |
| ·阿加曲班的干预研究 | 第42-43页 |
| ·iNOS 在脑出血中的可能作用机制 | 第43-44页 |
| ·总述 | 第44-46页 |
| 6. 小结 | 第46-48页 |
| 参考文献 | 第48-52页 |
| 综述 | 第52-62页 |
| 参考文献 | 第57-62页 |
| 致谢 | 第62-63页 |