摘要 | 第1-6页 |
ABSTRACT | 第6-7页 |
目录 | 第7-10页 |
第一章 文献综述 | 第10-21页 |
·DF | 第10-13页 |
·CF | 第11页 |
·NDF | 第11页 |
·ADF | 第11-12页 |
·DF 生理功能 | 第12-13页 |
·提供能量 | 第12页 |
·维持胃肠道蠕动 | 第12页 |
·代谢效应 | 第12页 |
·对肠腔微生物影响 | 第12-13页 |
·粘蛋白(MUCIN) | 第13-18页 |
·MUC1 | 第14-16页 |
·MUC1 结构与合成分布 | 第14-15页 |
·MUC1 生理功能 | 第15-16页 |
·MUC2 | 第16-17页 |
·MUC2 结构与合成分布 | 第16-17页 |
·MUC2 生理功能 | 第17页 |
·FASN 与 MUC2 | 第17-18页 |
·DF 与黏液屏障 | 第18-19页 |
·兔消化道疾病与黏液屏障 | 第19页 |
·小结 | 第19页 |
·本试验的目的,意义和内容 | 第19-21页 |
·试验目的和意义 | 第19-20页 |
·试验内容 | 第20-21页 |
第二章 獭兔肠 MUC1 表达量的相对定量 | 第21-33页 |
·试验材料 | 第21-23页 |
·试验设计与饲养管理 | 第21-22页 |
·试验样本 | 第22页 |
·主要试剂与仪器设备 | 第22-23页 |
·试剂 | 第22页 |
·仪器设备 | 第22-23页 |
·试验方法 | 第23-27页 |
·总 RNA 提取 | 第23-24页 |
·总 RNA 电泳 | 第24-25页 |
·总 RNA 浓度和质量检测 | 第25页 |
·獭兔第一链 cDNA 合成 | 第25-26页 |
·獭兔 MUC1 定量引物合成 | 第26页 |
·引物稀释及荧光定量 PCR 最佳反应条件的确定 | 第26页 |
·獭兔 MUC1 荧光定量 PCR 反应程序 | 第26-27页 |
·数据处理及分析 | 第27页 |
·结果与分析 | 第27-31页 |
·总 RNA 检测 | 第27-28页 |
·PCR 检测 | 第28页 |
·MUC1 荧光定量结果 | 第28-31页 |
·讨论 | 第31-32页 |
·结论 | 第32-33页 |
第三章 獭兔肠 MUC2 表达量的相对定量 | 第33-39页 |
·试验材料 | 第33页 |
·试验方法 | 第33-34页 |
·獭兔总 RNA 提取 | 第33页 |
·总 RNA 电泳 | 第33页 |
·总 RNA 浓度和质量检测 | 第33页 |
·獭兔第一链 cDNA 合成 | 第33页 |
·獭兔 MUC2 扩增引物 | 第33-34页 |
·獭兔 MUC2 定量引物合成 | 第34页 |
·引物稀释及荧光定量 PCR 最佳反应条件的确定 | 第34页 |
·獭兔 MUC2 荧光定量 PCR 反应程序 | 第34页 |
·数据处理及分析 | 第34页 |
·结果与分析 | 第34-37页 |
·PCR 扩增结果 | 第34页 |
·测序与 BLASTx 比对结果 | 第34-35页 |
·定量 PCR 电泳检测 | 第35页 |
·MUC2 荧光定量结果 | 第35-37页 |
·讨论 | 第37-38页 |
·结论 | 第38-39页 |
第四章 FASN 表达与 MUC2 表达的相关性分析 | 第39-46页 |
·试验材料 | 第39页 |
·试验方法 | 第39-40页 |
·獭兔总 RNA 提取 | 第39页 |
·总 RNA 电泳 | 第39页 |
·总 RNA 浓度和质量检测 | 第39页 |
·獭兔第一链 cDNA 合成 | 第39页 |
·獭兔 FASN 扩增引物 | 第39-40页 |
·獭兔 FASN 定量引物合成 | 第40页 |
·引物稀释及荧光定量 PCR 最佳反应条件的确定 | 第40页 |
·獭兔 FASN 荧光定量 PCR 反应程序 | 第40页 |
·数据处理及分析 | 第40页 |
·结果与分析 | 第40-44页 |
·PCR 扩增结果 | 第40-41页 |
·测序与 BLASTx 比对结果 | 第41-42页 |
·定量 PCR 电泳检测 | 第42页 |
·FASN 荧光定量结果 | 第42-44页 |
·讨论 | 第44-45页 |
·结论 | 第45-46页 |
第五章 结论与创新点 | 第46-47页 |
参考文献 | 第47-51页 |
附录 | 第51-52页 |
致谢 | 第52-53页 |
作者简介 | 第53页 |