| 摘要 | 第1-4页 |
| Abstract | 第4-11页 |
| 引言 | 第11-13页 |
| 技术路线 | 第13-14页 |
| 第一部分 腺苷 A1 受体参与大鼠炎症痛及电针镇痛 | 第14-24页 |
| 实验一 电针腰夹脊穴对佐剂性关节炎大鼠的镇痛作用 | 第14-18页 |
| 1 材料 | 第14页 |
| ·实验动物 | 第14页 |
| ·主要试剂和仪器 | 第14页 |
| 2 实验方法 | 第14-16页 |
| ·佐剂性关节炎（AA）大鼠模型建立 | 第14-15页 |
| ·动物分组及处理 | 第15页 |
| ·电针方法 | 第15页 |
| ·痛阈测定 | 第15-16页 |
| ·统计方法 | 第16页 |
| 3 结果与分析 | 第16-18页 |
| ·大鼠一般情况 | 第16页 |
| ·电针腰夹脊穴对 AA 大鼠痛阈的影响 | 第16-18页 |
| 实验二 腺苷 A1受体在炎症痛中的镇痛作用及电针的影响 | 第18-24页 |
| 1 材料 | 第18页 |
| ·实验动物 | 第18页 |
| ·主要试剂和仪器 | 第18页 |
| 2 实验方法 | 第18-20页 |
| ·佐剂性关节炎（AA）大鼠模型建立 | 第18页 |
| ·动物分组及处理 | 第18-19页 |
| ·侧脑室埋管与注射 | 第19页 |
| ·电针方法 | 第19页 |
| ·痛阈测定 | 第19页 |
| ·统计方法 | 第19-20页 |
| 3 结果与分析 | 第20-24页 |
| ·一般情况 | 第20页 |
| ·非电针组各组侧脑室微量注射前后痛阈变化 | 第20-21页 |
| ·电针组各组侧脑室注射前后痛阈变化 | 第21-22页 |
| ·电针对侧脑室注射腺苷 A1受体激动剂 CCPA 的影响 | 第22页 |
| ·电针对侧脑室注射腺苷 A1受体拮抗剂 DPCPX 的影响 | 第22-24页 |
| 第二部分 腺苷 A1 受体参与佐剂性关节炎大鼠的免疫调节及电针的作用机制 | 第24-32页 |
| 实验一 电针腰夹脊穴对佐剂性关节炎大鼠的免疫调节作用 | 第24-29页 |
| 1 材料 | 第24页 |
| ·实验动物 | 第24页 |
| ·主要试剂与仪器 | 第24页 |
| 2 方法 | 第24-26页 |
| ·AA 大鼠模型的建立 | 第24页 |
| ·动物分组及处理 | 第24页 |
| ·电针方法 | 第24页 |
| ·足跖容积的测定 | 第24-25页 |
| ·标本的采集与处理 | 第25页 |
| ·酶联免疫吸附试验 | 第25页 |
| ·统计分析 | 第25-26页 |
| 3 结果与分析 | 第26-29页 |
| ·电针腰夹脊穴对 AA 大鼠右后足足跖容积及足跖肿胀率的影响 | 第26-27页 |
| ·电针腰夹脊穴对 AA 大鼠血清 IL-1β、IL-12 的影响 | 第27-29页 |
| 实验二 腺苷 A1受体对 AA 大鼠免疫功能的调节和电针的影响 | 第29-32页 |
| 1 材料 | 第29页 |
| ·实验动物 | 第29页 |
| ·主要试剂与仪器 | 第29页 |
| 2 方法 | 第29页 |
| ·AA 大鼠模型的建立 | 第29页 |
| ·动物分组及处理 | 第29页 |
| ·电针方法 | 第29页 |
| ·标本的采集与处理 | 第29页 |
| ·检测指标及方法 | 第29页 |
| ·统计方法 | 第29页 |
| 3 结果与分析 | 第29-32页 |
| 第三部分 ADORA1和 5-HT1AR 在 AA 大鼠下丘脑和脊髓的表达及电针的影响 | 第32-52页 |
| 实验一 ADORA1在 AA 大鼠下丘脑和脊髓的表达及电针的影响 | 第32-47页 |
| 1 材料 | 第32-33页 |
| ·实验动物 | 第32页 |
| ·主要试剂与仪器 | 第32-33页 |
| 2 方法 | 第33-38页 |
| ·AA 大鼠模型的建立 | 第33页 |
| ·动物分组及处理 | 第33-34页 |
| ·电针方法 | 第34页 |
| ·免疫组化标本的采集与处理 | 第34-35页 |
| ·实时荧光定量 PCR 检测 AA 大鼠下丘脑和脊髓腺苷 A1受体 mRNA 表达 | 第35-38页 |
| 3 统计分析 | 第38页 |
| 4 结果与分析 | 第38-45页 |
| ·ADORA1在大鼠下丘脑和脊髓的免疫组化表达 | 第38-42页 |
| ·实时荧光定量 PCR 法检测 AA 大鼠下丘脑和脊髓的 ADORA1mRNA 表达 | 第42-45页 |
| 5.小结 | 第45-47页 |
| 实验二 5-HT1AR 在 AA 大鼠下丘脑和脊髓的表达及电针的影响 | 第47-52页 |
| 1 材料 | 第47页 |
| ·实验动物 | 第47页 |
| ·主要试剂与仪器 | 第47页 |
| 2.方法 | 第47-48页 |
| ·AA 大鼠模型的建立 | 第47页 |
| ·动物分组及处理 | 第47页 |
| ·电针方法 | 第47页 |
| ·免疫组化法检测方法 | 第47页 |
| ·RT-PCR 检测方法 | 第47-48页 |
| 3 统计分析 | 第48页 |
| 4 结果与分析 | 第48-51页 |
| ·5-HT1AR 在下丘脑和脊髓的免疫组化表达 | 第48-49页 |
| ·实时荧光定量 PCR 法检测 5-HT1ARmRNA 在下丘脑和脊髓的表达 | 第49-51页 |
| 5 小结 | 第51-52页 |
| 第四部分 电针对炎症痛大鼠相关信号转导通路的影响 | 第52-58页 |
| 1 材料 | 第52页 |
| ·实验动物 | 第52页 |
| ·主要试剂与仪器 | 第52页 |
| 2.方法 | 第52页 |
| ·AA 大鼠模型的建立 | 第52页 |
| ·动物分组及处理 | 第52页 |
| ·电针方法 | 第52页 |
| ·RT-PCR 标本的采集与处理 | 第52页 |
| 3 统计分析 | 第52-53页 |
| 4 结果与分析 | 第53-57页 |
| ·基因扩增曲线和熔解曲线 | 第53页 |
| ·数据分析结果 | 第53-57页 |
| 5.小结 | 第57-58页 |
| 讨论 | 第58-70页 |
| 1.关于佐剂关节炎模型 | 第58页 |
| 2.腺苷和腺苷 A1受体参与炎症痛及电针镇痛 | 第58-60页 |
| 3.腺苷和腺苷 A1 受体参与免疫调节及电针的影响 | 第60-62页 |
| 4.腺苷 A1受体在神经系统的表达及电针的影响 | 第62-63页 |
| 5. 5-HT1A受体在神经系统的表达及电针的影响 | 第63-64页 |
| 6 信号转导通路在疼痛信息传递中的作用 | 第64-70页 |
| ·G 蛋白 | 第65-66页 |
| ·MAPK 信号转导通路 | 第66-70页 |
| 结语 | 第70-71页 |
| 参考文献 | 第71-76页 |
| 综述 | 第76-82页 |
| 参考文献 | 第79-82页 |
| 附录 | 第82-83页 |
| 缩略语表 | 第83-84页 |
| 致谢 | 第84-85页 |
| 查新报告 | 第85-94页 |
| 发表论文 | 第94-98页 |
| 详细摘要 | 第98-105页 |
