| 摘要 | 第1-12页 |
| Abstract | 第12-15页 |
| 第一章 文献综述 | 第15-26页 |
| 1 多糖的提取 | 第15-17页 |
| ·溶剂提取法 | 第15页 |
| ·酸提取法 | 第15页 |
| ·碱提取法 | 第15-16页 |
| ·微波辅助提取法 | 第16页 |
| ·酶解法 | 第16页 |
| ·超声波辅助提取法 | 第16-17页 |
| 2 多糖的分离纯化 | 第17-18页 |
| ·多糖提取中杂质的去除 | 第17页 |
| ·多糖的分离纯化 | 第17-18页 |
| ·多糖的纯度鉴定 | 第18页 |
| 3 多糖的生物活性 | 第18-20页 |
| ·抗肿瘤活性 | 第18-19页 |
| ·免疫调节活性 | 第19页 |
| ·抗病毒活性 | 第19页 |
| ·抗氧化、抗衰老活性 | 第19-20页 |
| ·降血糖、降血脂活性 | 第20页 |
| ·抗疲劳活性 | 第20页 |
| 4 衰老机制的研究概况 | 第20-23页 |
| ·环境伤害衰老理论 | 第21-22页 |
| ·遗传衰老理论 | 第22-23页 |
| 5 莲子的研究现状 | 第23-25页 |
| ·莲子的主要化学成分及营养价值 | 第23-24页 |
| ·莲子的开发利用现状 | 第24页 |
| ·莲子活性成分研究现状 | 第24-25页 |
| 6 本项目的研究目的和意义 | 第25-26页 |
| 第二章 莲子多糖提取工艺的研究 | 第26-39页 |
| 1 材料与仪器 | 第26页 |
| ·材料与试剂 | 第26页 |
| ·主要仪器 | 第26页 |
| 2 试验方法 | 第26-28页 |
| ·莲子多糖的提取工艺 | 第26-27页 |
| ·葡萄糖标准曲线的制作 | 第27页 |
| ·单因素水平设计 | 第27页 |
| ·正交试验 | 第27-28页 |
| ·数据处理 | 第28页 |
| 3 试验结果与分析 | 第28-38页 |
| ·葡萄糖标准曲线 | 第28页 |
| ·水提莲子多糖试验结果 | 第28-31页 |
| ·酸提莲子多糖试验结果 | 第31-34页 |
| ·碱提莲子多糖试验结果 | 第34-38页 |
| 4 小结 | 第38-39页 |
| 第三章 莲子多糖分离纯化及体外抗氧化作用的研究 | 第39-46页 |
| 1 材料与仪器 | 第39-40页 |
| ·材料与试剂 | 第39页 |
| ·主要仪器 | 第39-40页 |
| 2 试验方法 | 第40-41页 |
| ·莲子多糖的分离纯化 | 第40页 |
| ·莲子多糖的总抗氧化能力、总超氧化物歧化酶活性和 DPPH·清除率的测定 | 第40-41页 |
| ·数据处理 | 第41页 |
| 3 结果与分析 | 第41-45页 |
| ·莲子多糖的纯化结果 | 第41-43页 |
| ·莲子多糖的抗氧化能力测定 | 第43-45页 |
| 4 小结 | 第45-46页 |
| 第四章 莲子多糖对果蝇寿命影响的研究 | 第46-51页 |
| 1 材料与仪器 | 第46页 |
| ·材料与试剂 | 第46页 |
| ·主要仪器 | 第46页 |
| 2 试验方法 | 第46-47页 |
| ·基础培养基的制备 | 第46-47页 |
| ·实验组培养基 | 第47页 |
| ·培养条件 | 第47页 |
| ·果蝇生存试验 | 第47页 |
| ·数据处理 | 第47页 |
| 3 实验结果与分析 | 第47-50页 |
| ·莲子多糖对果蝇半数死亡时间的影响 | 第47-48页 |
| ·莲子多糖对对果蝇平均寿命的影响 | 第48页 |
| ·莲子多糖对果蝇最高寿命的影响 | 第48-49页 |
| ·莲子多糖对果蝇平均寿命延长率的影响 | 第49页 |
| ·喂食莲子多糖的果蝇生长曲线 | 第49-50页 |
| 4 小结 | 第50-51页 |
| 第五章 莲子多糖对果蝇抗氧化作用的影响 | 第51-57页 |
| 1 材料与仪器 | 第51-52页 |
| ·材料与试剂 | 第51页 |
| ·主要仪器 | 第51-52页 |
| 2 试验方法 | 第52页 |
| ·基础培养基的制备 | 第52页 |
| ·实验组培养基 | 第52页 |
| ·培养条件 | 第52页 |
| ·果蝇 SOD 活性、T-AOC、清除羟自由基能力、MDA 含量、CAT 和超氧阴离子自由基的测定 | 第52页 |
| ·数据处理 | 第52页 |
| 3 结果与分析 | 第52-56页 |
| ·蛋白质标准曲线 | 第52-53页 |
| ·莲子多糖对果蝇组织总抗氧化能力的影响 | 第53页 |
| ·莲子多糖对果蝇组织中抗超氧阴离子的影响 | 第53-54页 |
| ·莲子多糖对果蝇组织中 MDA 含量的影响 | 第54页 |
| ·莲子多糖对果蝇组织抑制羟自由基能力的影响 | 第54-55页 |
| ·莲子多糖对果蝇组织匀浆中 CAT 活力的影响 | 第55页 |
| ·莲子多糖对果蝇组织总 SOD 活力的影响 | 第55-56页 |
| 4 小结 | 第56-57页 |
| 第六章 实时荧光定量 PCR 检测果蝇中的 CuZnSOD、MnSOD 和 CAT 基因 | 第57-66页 |
| 1 材料与仪器 | 第57-58页 |
| ·材料与试剂 | 第57-58页 |
| ·主要仪器 | 第58页 |
| 2 试验方法 | 第58-61页 |
| ·基础培养基的制备 | 第58页 |
| ·实验组培养基 | 第58页 |
| ·30%双氧水处理 | 第58-59页 |
| ·总 RNA 提取 | 第59页 |
| ·总 RNA 的电泳显示 | 第59页 |
| ·引物序列 | 第59-60页 |
| ·cDNA 合成 | 第60页 |
| ·实时定量 PCR | 第60-61页 |
| 3 实验结果与分析 | 第61-65页 |
| ·双氧水处理对果蝇存活时间的影响 | 第61-62页 |
| ·RNA 完整性检测 | 第62-63页 |
| ·不同剂量莲子多糖处理下果蝇 CuZnSOD 基因、MnSOD 基因和 CAT 基因表达的电泳检测 | 第63-64页 |
| ·莲子多糖对果蝇 CuZnSOD 基因、MnSOD 基因和 CAT 基因表达的影响 | 第64-65页 |
| 4 小结 | 第65-66页 |
| 结论 | 第66-68页 |
| 参考文献 | 第68-74页 |
| 致谢 | 第74页 |
