| 术语和縮略语表 | 第1-9页 |
| 摘要 | 第9-11页 |
| ABSTRACT | 第11-13页 |
| 第1章 绪论 | 第13-28页 |
| ·N-乙酰-β-D-氨基葡萄糖苷酶的研究概况 | 第13-18页 |
| ·N-乙酰-β-D-氨基葡萄糖苷酶概述 | 第13-14页 |
| ·N-乙酰-β-D-氨基葡萄糖苷酶的纯化和性质研究 | 第14-16页 |
| ·N-乙酰-β-D-氨基葡萄糖苷酶的分子生物学研究 | 第16-17页 |
| ·N-乙酰-β-D-氨基葡萄糖苷酶在水生生态毒理学中的应用 | 第17-18页 |
| ·大型溞(Daphnia magna)的研究进展 | 第18-20页 |
| ·大型溞(Daphnia magna)概述 | 第18页 |
| ·以大型溞为试验生物的生态毒性测定方法的研究进展 | 第18-20页 |
| ·蛋白的分离纯化方法 | 第20-22页 |
| ·盐析法(Salt fractionation) | 第20-21页 |
| ·色谱法(Chromatography) | 第21-22页 |
| ·抗体的制备方法 | 第22-24页 |
| ·常规血清技术 | 第23页 |
| ·杂交瘤技术 | 第23页 |
| ·基因工程抗体技术 | 第23-24页 |
| ·抗体库技术 | 第24页 |
| ·酶联免疫吸附测定 | 第24-25页 |
| ·本研究的研究目的意义和研究的主要内容 | 第25-28页 |
| ·研究目的意义 | 第25-27页 |
| ·研究的主要内容 | 第27页 |
| ·研究的预期目标 | 第27-28页 |
| 第2章 大型溞(DAPHNIA MAGNA)N-乙酰-B-D-氨基葡萄糖苷酶纯化产物的动力学特性 | 第28-39页 |
| ·材料与方法 | 第28-31页 |
| ·试验材料 | 第28-29页 |
| ·试验方法 | 第29-31页 |
| ·结果与分析 | 第31-37页 |
| ·酶的分离纯化 | 第31-33页 |
| ·酶催化反应的动力学性质研究 | 第33-37页 |
| ·讨论 | 第37-39页 |
| 第3章 大型溞NAGASE多克隆抗体的制备和ELISA方法的建立 | 第39-46页 |
| ·试验材料 | 第39-40页 |
| ·试剂及ELISA缓冲液 | 第39页 |
| ·实验仪器 | 第39-40页 |
| ·生物材料 | 第40页 |
| ·试验方法 | 第40-42页 |
| ·抗体的制备 | 第40-41页 |
| ·间接非竞争ELISA法的质量控制 | 第41-42页 |
| ·结果与分析 | 第42-46页 |
| ·抗血清的效价 | 第42页 |
| ·确定最适抗原抗体工作浓度 | 第42-44页 |
| ·标准曲线 | 第44页 |
| ·测定大型溞NAGase的间接非竞争ELISA法的质量控制 | 第44-46页 |
| ·讨论 | 第46页 |
| 第4章 大型溞NAGASE抗血清特异性研究 | 第46-52页 |
| ·试验材料 | 第47-48页 |
| ·试剂及ELISA缓冲液 | 第47页 |
| ·实验仪器 | 第47页 |
| ·生物材料 | 第47-48页 |
| ·实验方法 | 第48-49页 |
| ·大型溞及其他节肢动物水中游离NAGase酶液制备 | 第48页 |
| ·大型溞及其他节肢动物体内NAGase制备 | 第48页 |
| ·体内NAGase水中游离NAGase蛋白含量及活性测定 | 第48页 |
| ·体内NAGase和水中游离NAGase间接非竞争ELISA法测定操作步骤 | 第48-49页 |
| ·结果与分析 | 第49-52页 |
| ·讨论 | 第52页 |
| 第5章 丁醚脲对水中大型溞NAGASE释放量的影响 | 第52-64页 |
| ·材料与方法 | 第53-56页 |
| ·试验材料 | 第53-54页 |
| ·实验仪器与设备 | 第54页 |
| ·试验方法 | 第54-56页 |
| ·结果与分析 | 第56-61页 |
| ·丁醚脲生物测定 | 第56-61页 |
| ·小结与讨论 | 第61-64页 |
| ·丁醚脲生物测定 | 第61-64页 |
| 第6章 讨论 | 第64-68页 |
| ·大型溞NAGase的分离纯化和理化性质 | 第64-66页 |
| ·大型溞NAGase多克隆抗体的制备和水中游离NAGase-IR ELISA检测方法的建立 | 第66页 |
| ·丁醚脲暴露对水中大型溞NAGase释放量的影响 | 第66-67页 |
| ·展望与不足 | 第67-68页 |
| 参考文献 | 第68-78页 |
| 致谢 | 第78页 |
