| 缩写词 | 第1-6页 |
| 摘要 | 第6-7页 |
| ABSTRACT | 第7-9页 |
| 第一章 选题依据与文献评述 | 第9-25页 |
| 1.研究意义与研究动态 | 第9-11页 |
| 2.研究内容及目的 | 第11页 |
| 3.切花采后生理及分子生物学研究现状 | 第11-25页 |
| ·乙烯与切花衰老的关系 | 第11-14页 |
| ·乙烯的生物合成机制和调控研究进展 | 第14-15页 |
| ·乙烯受体与乙烯信号转导研究进展 | 第15-25页 |
| 第二章 百合乙烯受体基因LERS1 CDNA的克隆与序列分析 | 第25-54页 |
| 1.材料与方法 | 第25-32页 |
| ·仪器与试剂 | 第25页 |
| ·百合花瓣总RNA提取方法： | 第25-26页 |
| ·百合花瓣LERS1保守区的扩增 | 第26-29页 |
| ·百合花瓣LERS1基因cDNA的3′RACE | 第29-30页 |
| ·LERS1基因cDNA的5′RACE | 第30-31页 |
| ·百合LERS1基因cDNA开放阅读框(ORF)的扩增： | 第31-32页 |
| 2.结果与分析 | 第32-52页 |
| ·百合花瓣总RNA提取 | 第32-33页 |
| ·百合花瓣乙烯受体基因LERS1保收区的扩增 | 第33-34页 |
| ·百合花瓣LERS1基因cDNA的3′RACE | 第34-35页 |
| ·百合花瓣LERS1基因cDNA的5′RACE | 第35-37页 |
| ·百合花瓣LERS1基因cDNA全长获得 | 第37-41页 |
| ·百合花瓣乙烯受体基因LERS1核酸与蛋白序列分析 | 第41-52页 |
| 3 讨论 | 第52-54页 |
| 第三章 百合信号转导系统LCTR1基因CDNA的克隆与序列分析 | 第54-65页 |
| 1 材料与方法 | 第54-56页 |
| ·仪器与试剂 | 第54页 |
| ·百合花瓣总RNA提取方法 | 第54页 |
| ·百合花瓣LCTR1基因保守区的扩增 | 第54-55页 |
| ·百合花瓣中LCTR1 cDNA的3′RACE | 第55-56页 |
| 2 结果与分析 | 第56-63页 |
| ·百合花瓣LCTR1基因保守区的扩增 | 第56-57页 |
| ·百合花LCTR1基因cDNA的3′RACE | 第57-59页 |
| ·百合花瓣LCTR1基因的核酸与所编码的蛋白序列分析 | 第59-63页 |
| ·进化树分析 | 第63页 |
| 3 讨论 | 第63-65页 |
| 第四章 百合乙烯受体蛋白PLETR1基因CDNA的克隆与序列分析 | 第65-71页 |
| 1 材料与方法 | 第65页 |
| ·仪器与试剂 | 第65页 |
| ·百合花瓣RNA提取方法 | 第65页 |
| ·百合花瓣PLETR1保守区的扩增 | 第65页 |
| 2 结果与分析 | 第65-69页 |
| ·百合花瓣乙烯受体基因PLETR1保收区的扩增 | 第65-67页 |
| ·百合花瓣乙烯受体基因PLETR1核酸与蛋白序列分析 | 第67-69页 |
| ·进化树分析 | 第69页 |
| 3 讨论 | 第69-71页 |
| 第五章 小结与讨论 | 第71-76页 |
| 1.小结 | 第71页 |
| 2.讨论 | 第71-76页 |
| ·百合花瓣总RNA提取与纯化过程中多糖等干扰物质的排除 | 第71-72页 |
| ·百合中的乙烯受体家族及信号转导系统 | 第72-74页 |
| ·乙烯受体在百合切花采后衰老中的作用及应用探讨 | 第74-76页 |
| 参考文献: | 第76-82页 |
| 致谢 | 第82页 |
