中文摘要 | 第1-7页 |
英文摘要 | 第7-9页 |
前言 | 第9-11页 |
一、材料与方法 | 第11-16页 |
(一) 实验材料 | 第11页 |
1. 实验室 | 第11页 |
2. 主要仪器 | 第11页 |
3. 主要试剂 | 第11页 |
4. 实验动物 | 第11页 |
(二) 实验方法 | 第11-15页 |
1. 玻片处理 | 第11-12页 |
2. 薄骨片制备与处理 | 第12页 |
3. 破骨细胞体系的建立 | 第12页 |
4. 破骨细胞形态观察 | 第12-13页 |
5. siRNA序列的设计与合成 | 第13-14页 |
6. 细胞共转染、标记以及观察 | 第14-15页 |
7. 骨片及骨陷窝染色、骨陷窝计数,面积计算方法 | 第15页 |
(三) 统计学方法 | 第15-16页 |
二、结果 | 第16-20页 |
(一) 未经RNAi处理的大鼠骨髓细胞诱导分化成破骨细胞过程中的形态变化 | 第16-18页 |
1. 不同时期的破骨细胞的常规光学显微镜形态变化 | 第16页 |
2. 不同时期的破骨细胞生化特性 | 第16-17页 |
3. 不同时期骨陷窝的形成特点 | 第17-18页 |
(二) siRNA转染后破骨细胞的变化 | 第18-20页 |
1. siRNA的转染 | 第18页 |
2. 破骨细胞形态变化 | 第18页 |
3. 骨陷窝的变化特点 | 第18-20页 |
三、分析与讨论 | 第20-31页 |
(一) 祖国医学对激素性股骨头无菌性坏死的认识 | 第20页 |
(二) 破骨细胞在激素性股骨头无菌性坏死病程发展中的作用 | 第20-22页 |
(三) 采用骨髓诱导法建立破骨细胞体外诱导培养体系 | 第22-24页 |
(四) 质子泵对于破骨细胞维持正常的骨吸收功能是必需的 | 第24-26页 |
(五) 以与破骨细胞共培养骨片上的骨吸收陷窝面积衡量破骨细胞骨吸收功能 | 第26-27页 |
(六) RNA干扰可以高效、高特异性的降解细胞内同源的mRNA来抑制同源基因的表达 | 第27-28页 |
(七) 所设计的siRNA序列转染后对破骨细胞骨吸收功能的影响 | 第28-31页 |
四、小结 | 第31-32页 |
五、结论 | 第32-33页 |
参考文献 | 第33-36页 |
附图 | 第36-45页 |
致谢 | 第45-46页 |
文献综述 | 第46-53页 |