| 中文摘要 | 第1-10页 |
| ABSTRACT | 第10-14页 |
| 中文缩写 | 第14-15页 |
| 第一章 文献综述及前言 | 第15-30页 |
| 1 黄瓜性别决定相关基因和性别表达机制 | 第15-23页 |
| ·黄瓜性别决定基因 | 第16-19页 |
| ·黄瓜性别决定基因及其功能 | 第16-17页 |
| ·黄瓜花器官同源异型基因克隆 | 第17-18页 |
| ·F、M位点互作分子模型 | 第18-19页 |
| ·乙烯影响黄瓜性别的分子生物学 | 第19-23页 |
| ·乙烯合成关键酶ACC合酶基因 | 第19-21页 |
| ·乙烯信号转导基因EIN3基因 | 第21-22页 |
| ·单一激素控制黄瓜花型表现假说 | 第22-23页 |
| 2 单核苷酸多态性研究进展 | 第23-28页 |
| ·SNP概念与特点 | 第24-25页 |
| ·SNP主要研究内容 | 第25页 |
| ·植物SNP搜索的及基因型分型 | 第25页 |
| ·植物目的性状相关SNP的搜索 | 第25-27页 |
| ·PCR扩增目的序列及其产物的直接测序法 | 第25-26页 |
| ·SNP发现的其他方法 | 第26-27页 |
| ·植物SNP的基因型分型 | 第27页 |
| ·SNP在作物遗传以及改良中的应用 | 第27-28页 |
| 3 前言 | 第28-30页 |
| ·选题背景及意义 | 第28页 |
| ·研究目标 | 第28-29页 |
| ·技术路线 | 第29-30页 |
| 第二章 黄瓜EIN3基因与其它作物EIN3基因同源性分析 | 第30-49页 |
| 1 材料与方法 | 第30-37页 |
| ·试验材料 | 第30页 |
| ·研究方法 | 第30-33页 |
| ·基因组DNA提取 | 第30-32页 |
| ·DNA样品的检测 | 第32页 |
| ·获得外显子序列的引物设计 | 第32页 |
| ·PCR扩增 | 第32-33页 |
| ·PCR产物的克隆测序 | 第33-37页 |
| ·PCR产物的纯化回收 | 第33-34页 |
| ·PCR产物与载体的连接 | 第34页 |
| ·感受态细胞的制备 | 第34-35页 |
| ·感受态细胞的转化 | 第35-36页 |
| ·重组质粒的提取 | 第36页 |
| ·重组质粒的筛选与鉴定 | 第36-37页 |
| ·阳性克隆测序 | 第37页 |
| ·核苷酸序列分析及同源性分析 | 第37页 |
| ·氨基酸序列同源性分析 | 第37页 |
| ·EIN3基因的聚类分析 | 第37页 |
| 2 结果与分析 | 第37-47页 |
| ·基因组DNA的提取结果 | 第37-38页 |
| ·PCR产物电泳结果 | 第38页 |
| ·重组质粒的转化、筛选与鉴定 | 第38-40页 |
| ·测序结果 | 第40-41页 |
| ·氨基酸序列 | 第41-44页 |
| ·氨基酸序列同源性分析 | 第44页 |
| ·CsEIN3、C1EIN3及CmEIN3蛋白序列 | 第44-45页 |
| ·不同来源EIN3基因核苷酸序列同源性比较 | 第45-47页 |
| ·不同来源的EIN3同源基因的氨基酸序列同源性分析 | 第47页 |
| 3 讨论 | 第47页 |
| 4 小结 | 第47-49页 |
| 第三章 黄瓜EIN3基因的SNP及RFLP-BfmⅠ分析 | 第49-59页 |
| 1 材料与方法 | 第49-52页 |
| ·实验材料 | 第49-50页 |
| ·材料的培养与黄瓜性别的鉴定 | 第50-51页 |
| ·基因组DNA提取 | 第51页 |
| ·引物设计 | 第51页 |
| ·PCR扩增条件 | 第51页 |
| ·PCR产物的克隆测序 | 第51页 |
| ·核苷酸序列分析SNP分析 | 第51页 |
| ·酶切条件 | 第51页 |
| ·PCR及酶切产物的检测 | 第51-52页 |
| 2 结果与分析 | 第52-57页 |
| ·基因组DNA的提取结果 | 第52页 |
| ·PCR产物的电泳结果 | 第52-53页 |
| ·重组质粒的转化、筛选与鉴定结果 | 第53页 |
| ·核苷酸序列的分析 | 第53-55页 |
| ·氨基酸序列分析 | 第55-57页 |
| ·酶切产物的电泳结果 | 第57页 |
| 3 讨论 | 第57-58页 |
| 4 小结 | 第58-59页 |
| 第四章 黄瓜雌性性状主控基因CsACS1G等位基因的分析及其定位 | 第59-67页 |
| 1 材料与方法 | 第59-62页 |
| ·实验材料 | 第59页 |
| ·黄瓜性别的鉴定 | 第59-60页 |
| ·基因组DNA提取 | 第60页 |
| ·CsACS1G基因在单株间的检测分析 | 第60页 |
| ·PCR扩增及电泳分析 | 第60-61页 |
| ·群体的SCAR标记的检测和数据的收集 | 第61-62页 |
| ·标记的图谱定位 | 第62页 |
| 2 结果与分析 | 第62-64页 |
| ·CsACS1G在不同性型植株间的检测分析结果 | 第62-64页 |
| ·CsACS1G的定位 | 第64页 |
| 3 讨论 | 第64-66页 |
| 4 小结 | 第66-67页 |
| 结论 | 第67-68页 |
| 本论文的创新之处及下一步工作设想 | 第68-69页 |
| 参考文献 | 第69-75页 |
| 致谢 | 第75-76页 |
| 作者简历 | 第76-77页 |
| 附录 | 第77-92页 |
