缩略词表 | 第1-9页 |
中文摘要 | 第9-12页 |
英文摘要 | 第12-15页 |
前言 | 第15-17页 |
第一部分 标化大鼠视神经不同程度部分损伤动物模型的建立和评价 | 第17-37页 |
材料和方法 | 第17-23页 |
1. 材料 | 第17-18页 |
2. 方法 | 第18-22页 |
2.1. 致伤强度的标定发 | 第18页 |
2.1.1. 原理 | 第18页 |
2.1.2. 标定方法 | 第18页 |
2.2. 动物模型的制作和评价 | 第18-22页 |
2.2.1. 视神经夹持损伤模型的制作 | 第18-19页 |
2.2.2. 视网膜节细胞计数对损伤程度的评价 | 第19-21页 |
2.2.3. 轴突计数对损伤程度的评价 | 第21-22页 |
2.2.4. 视神经损伤模型视网膜血供变化的对比观察 | 第22页 |
3. 统计分析 | 第22-23页 |
结果 | 第23-28页 |
1. 致伤强度的标定 | 第23-24页 |
1.1. 作用力 | 第23页 |
1.2. 作用面积 | 第23页 |
1.3. 致伤量的标定——压强、冲量和平均冲量 | 第23-24页 |
2. 视神经损伤后视网膜节细胞的变化 | 第24-25页 |
3. 标化大鼠视神经损伤数学模型的建立 | 第25-27页 |
4. 视神经损伤后轴突的变化 | 第27-28页 |
5. 视神经损伤模型中视网膜血液供应的变化 | 第28页 |
讨论 | 第28-33页 |
参考文献 | 第33-37页 |
第二部分 大鼠视神经部分损伤及再生的形态学观察 | 第37-57页 |
材料和方法 | 第37-42页 |
1. 材料 | 第37-38页 |
2. 方法 | 第38-41页 |
2.1. 视神经部分损伤后RGC变化的观察 | 第38页 |
2.2. 视神经部分损伤后轴突变化的观察 | 第38页 |
2.3. 视神经部分损伤后GAP-43免疫电镜观察 | 第38-39页 |
2.4. 神经纤维染色对损伤后再生的观察 | 第39页 |
2.5. 有关公式的推导 | 第39-41页 |
2.5.1. RGC存活率的计算 | 第39-40页 |
2.5.2. RGC丢失率的计算 | 第40页 |
2.5.3. 视神经纵切面上神经纤维数的计算 | 第40页 |
2.5.4. 再生指数的计算 | 第40-41页 |
2.5.5. 神经纤维存活率的计算 | 第41页 |
2.5.6. 神经纤维丢失率的计算 | 第41页 |
3. 统计分析 | 第41-42页 |
结果 | 第42-48页 |
1. RGC的变化 | 第42-44页 |
2. 轴突数目的变化 | 第44-46页 |
3. 损伤后轴突形态的变化及免疫电镜观察 | 第46-47页 |
3.1. 髓鞘和轴突的破坏性改变 | 第46页 |
3.2. 新生的无髓纤维 | 第46-47页 |
3.3. GAP-43免疫电镜观察 | 第47页 |
4. 神经纤维特殊染色及对神经再生能力的评估 | 第47-48页 |
讨论 | 第48-54页 |
1. 研究方法的探讨 | 第49-50页 |
2. 视神经损伤后的反应 | 第50-54页 |
2.1. 视神经对损伤的抵抗力 | 第51页 |
2.2. RGC和神经轴突的丢失 | 第51-53页 |
2.3. 积极的再生修复过程使视神经自发再生 | 第53-54页 |
参考文献 | 第54-57页 |
第三部分 大鼠视神经部分损伤后的基因表达谱变化 | 第57-102页 |
材料和方法 | 第57-62页 |
1. 材料 | 第57-58页 |
2. 方法 | 第58-62页 |
2.1. 动物模型的制作 | 第59页 |
2.2. 总RNA提取 | 第59-60页 |
2.3. 探针标记与杂交 | 第60-62页 |
3. 数据的分析和处理 | 第62页 |
结果 | 第62-82页 |
1. RNA提取结果 | 第62-63页 |
2. 基因表达谱概况 | 第63-64页 |
3. 视神经损伤后基因表达的变化及功能分类 | 第64页 |
4. 基因的聚类分析 | 第64-82页 |
讨论 | 第82-88页 |
参考文献 | 第88-102页 |
全文总结 | 第102-104页 |
附录 致伤镊的力学性质分析及夹持力的测量 | 第104-110页 |
综述1 机械性视神经损伤模型 | 第110-123页 |
综述2 神经示踪技术 | 第123-157页 |
致谢 | 第157-158页 |
插页彩图 | 第158-173页 |