人骨髓间充质干细胞体外培养及成软骨诱导研究
| 摘要 | 第1-8页 |
| ABSTRACT | 第8-15页 |
| 第一章 绪论 | 第15-22页 |
| ·间充质干细胞及其应用优势 | 第15-16页 |
| ·间充质干细胞 | 第15页 |
| ·MSCs的应用优势 | 第15-16页 |
| ·MSCs的分离方法 | 第16-17页 |
| ·全骨髓法 | 第16页 |
| ·密度梯度离心法 | 第16页 |
| ·流式细胞仪分离法 | 第16-17页 |
| ·MSCs的鉴定 | 第17页 |
| ·流式细胞分析 | 第17页 |
| ·MSCs的功能学鉴定 | 第17页 |
| ·MSCs的扩增 | 第17-18页 |
| ·培养基 | 第17-18页 |
| ·培养密度 | 第18页 |
| ·MSCs向软骨分化过程中的诱导因素 | 第18-20页 |
| ·一般条件 | 第18页 |
| ·物理因素 | 第18-19页 |
| ·细胞因子 | 第19-20页 |
| ·细胞支架 | 第20页 |
| ·基因转染 | 第20页 |
| ·目前MSCs研究中存在的主要问题: | 第20-21页 |
| ·MSCs纯化的问题: | 第20-21页 |
| ·MSCs多向分化的机制 | 第21页 |
| ·MSCs的增殖分化条件的控制 | 第21页 |
| ·分化产物的功能 | 第21页 |
| ·MSCs与其他细胞间的相互作用 | 第21页 |
| ·MSCs应用展望 | 第21-22页 |
| 第二章 研究目的、方法、实验方案的设计和意义 | 第22-26页 |
| ·研究目的 | 第22页 |
| ·研究方法及技术 | 第22-23页 |
| ·实验方案的设计 | 第23-25页 |
| ·本研究的意义 | 第25-26页 |
| 第三章 人骨髓间充质干细胞的分离和体外培养 | 第26-34页 |
| ·材料和仪器 | 第26-27页 |
| ·骨髓来源 | 第26页 |
| ·材料 | 第26-27页 |
| ·主要仪器 | 第27页 |
| ·方法 | 第27-28页 |
| ·人MSCs的分离 | 第27页 |
| ·人MSCs的扩增 | 第27-28页 |
| ·MSCs生长曲线测定 | 第28页 |
| ·结果 | 第28-31页 |
| ·MSCs原代培养的倒置相差显微镜观察结果 | 第28页 |
| ·MSCs传代培养的倒置相差显微镜观察结果: | 第28-29页 |
| ·MSCs生长曲线 | 第29-31页 |
| ·讨论 | 第31-34页 |
| ·关节软骨损伤的修复 | 第31-32页 |
| ·骨髓间充质干细胞(MSCs)的分离纯化 | 第32-33页 |
| ·骨髓间充质干细胞(MSCs)的体外培养扩增 | 第33-34页 |
| 第四章 人骨髓间充质干细胞的成软骨诱导 | 第34-48页 |
| ·材料和仪器 | 第34-35页 |
| ·材料 | 第34页 |
| ·主要仪器 | 第34-35页 |
| ·方法 | 第35-37页 |
| ·人MSCs的成软骨细胞诱导培养 | 第35-36页 |
| ·软骨细胞检测: | 第36-37页 |
| ·结果 | 第37-45页 |
| ·MSCs成软骨诱导过程中的形态学观察 | 第37页 |
| ·甲苯胺蓝染色结果 | 第37页 |
| ·阿利新蓝染色结果 | 第37页 |
| ·Ⅱ型胶原免疫荧光结果: | 第37-38页 |
| ·GAG含量检测 | 第38-45页 |
| ·讨论 | 第45-48页 |
| ·转化生长因子β1(TGF-β1) | 第45页 |
| ·支架材料 | 第45-46页 |
| ·诱导条件控制 | 第46-48页 |
| 第五章 结论 | 第48-49页 |
| 参考文献 | 第49-54页 |
| 致谢 | 第54-55页 |
| 攻读硕士学位期间发表的文章及获奖 | 第55页 |
