β-叔醇酯/腈/酸光学纯度的HPLC检测和β-叔醇酯酶催化水解反应的初步研究
| 提要 | 第1-7页 |
| 第1章 前言 | 第7-20页 |
| ·手性化合物的来源 | 第7-12页 |
| ·来源于自然界的光学纯化合物 | 第8页 |
| ·不对称合成法 | 第8-10页 |
| ·外消旋体的拆分 | 第10-12页 |
| ·结晶法拆分 | 第10-11页 |
| ·化学法拆分 | 第11页 |
| ·生物法拆分 | 第11-12页 |
| ·色谱法拆分 | 第12页 |
| ·研究手性化合物合成分离的必要性 | 第12-13页 |
| ·含有手性叔醇结构化合物的重要生物活性 | 第13-16页 |
| ·β-叔醇酯化合物文献合成方法 | 第16-19页 |
| ·本课题研究内容 | 第19-20页 |
| 第2章 β-叔醇酯/腈的化学合成 | 第20-27页 |
| ·β-叔醇酯的合成 | 第20-21页 |
| ·实验设计 | 第20页 |
| ·结果与讨论 | 第20-21页 |
| ·β-叔醇腈的合成 | 第21-23页 |
| ·实验设计 | 第21-22页 |
| ·结果与讨论 | 第22-23页 |
| ·小结 | 第23页 |
| ·实验部分 | 第23-27页 |
| ·试剂和仪器 | 第23页 |
| ·合成部分 | 第23-27页 |
| 第3章 β-叔醇酯/腈/酸光学纯度的HPLC检测 | 第27-50页 |
| ·手性HPLC简介 | 第27-28页 |
| ·手性衍生化试剂法 | 第27页 |
| ·手性流动相添加剂拆分法 | 第27-28页 |
| ·手性固定相拆分法 | 第28页 |
| ·手性固定相分离原理 | 第28-30页 |
| ·手性固定相的分类 | 第30-37页 |
| ·刷型手行固定相 | 第31-32页 |
| ·多糖类手性固定相 | 第32-33页 |
| ·环糊精手性固定相 | 第33-34页 |
| ·蛋白质手性固定相 | 第34-35页 |
| ·大环抗生素手性固定相 | 第35-36页 |
| ·冠醚类手性固定相 | 第36页 |
| ·手性配体交换色谱 | 第36-37页 |
| ·β-叔醇酯/腈/酸光学纯度的HPLC检测 | 第37-47页 |
| ·实验设计 | 第37-38页 |
| ·结果与讨论 | 第38-47页 |
| ·β-叔醇酯光学纯度的HPLC检测条件考察 | 第38-42页 |
| ·β-叔醇腈光学纯度HPLC检测条件的考察 | 第42-44页 |
| ·β-叔醇酸光学纯度的HPLC检测条件考察 | 第44-47页 |
| ·小结 | 第47-48页 |
| ·实验部分 | 第48-50页 |
| ·仪器和试剂 | 第48页 |
| ·样品制备 | 第48-49页 |
| ·具体操作步骤 | 第49-50页 |
| 第4章 β-叔醇酯酶催化水解反应的初步研究 | 第50-62页 |
| ·有机合成中的生物催化 | 第50-51页 |
| ·组合化学的合成策略简介 | 第51-52页 |
| ·β-叔醇酯的酶催化水解反应 | 第52-60页 |
| ·实验设计 | 第52-53页 |
| ·结果与讨论 | 第53-60页 |
| ·酶催化活性筛选实验 | 第54页 |
| ·外标法测定反应的转化率 | 第54-57页 |
| ·助溶剂种类筛选实验 | 第57-58页 |
| ·助溶剂浓度筛选实验 | 第58-60页 |
| ·小结 | 第60页 |
| ·实验部分 | 第60-62页 |
| ·仪器和试剂 | 第60-61页 |
| ·实验操作部分 | 第61-62页 |
| 参考文献 | 第62-71页 |
| 附录 | 第71-77页 |
| 致谢 | 第77-78页 |
| 中文摘要 | 第78-81页 |
| Abstract | 第81-83页 |
