| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-9页 |
| 第1章 绪论 | 第9-22页 |
| ·周围神经损伤与修复 | 第9-10页 |
| ·神经生长因子在神经导管中的应用 | 第10-15页 |
| ·NGF的结构和生物学效应 | 第10-11页 |
| ·NGF缓释导管在周围神经损伤修复中的应用 | 第11-15页 |
| ·NGF应用于周围神经损伤治疗存在的问题 | 第15页 |
| ·神经生长因子的体外检测方法 | 第15-17页 |
| ·NGF的含量检测方法 | 第15-17页 |
| ·NGF的活性检测方法 | 第17页 |
| ·周围神经损伤的生物学评价 | 第17-20页 |
| ·体外评价 | 第18页 |
| ·体内评价 | 第18-20页 |
| ·论文选题目的和研究内容 | 第20-22页 |
| ·课题研究目的和研究意义 | 第20页 |
| ·课题研究内容 | 第20-22页 |
| 第2章 神经生长因子活性检测方法的优化 | 第22-31页 |
| ·研究背景与实验设计 | 第22页 |
| ·实验仪器和材料 | 第22-23页 |
| ·实验方法 | 第23-24页 |
| ·血清组分对PC-12细胞团聚的影响 | 第23页 |
| ·底物包被对PC-12细胞贴壁和增值的影响 | 第23-24页 |
| ·两种神经生长因子活性检测方法的比较 | 第24页 |
| ·结果与讨论 | 第24-30页 |
| ·血清组分对PC-12细胞团聚的影响 | 第24-26页 |
| ·底物包被对PC-12细胞贴壁和增值的影响 | 第26-27页 |
| ·两种神经生长因子活性检测方法的比较 | 第27-30页 |
| ·结论 | 第30-31页 |
| 第3章 RGD复合材料制备过程对NGF的影响 | 第31-37页 |
| ·实验仪器和材料 | 第31-32页 |
| ·实验方法 | 第32-33页 |
| ·有机溶剂作用对NGF的影响 | 第32-33页 |
| ·灭菌过程对NGF的影响 | 第33页 |
| ·结果与讨论 | 第33-36页 |
| ·有机溶剂作用对NGF的影响 | 第33-35页 |
| ·灭菌过程对NGF的影响 | 第35-36页 |
| ·结论 | 第36-37页 |
| 第4章 RGD复合材料的神经生长因子体外释放研究 | 第37-44页 |
| ·实验仪器和材料 | 第37-38页 |
| ·实验方法 | 第38-39页 |
| ·RGD复合材料浸提液的制备 | 第38-39页 |
| ·RGD复合材料的NGF释放量检测 | 第39页 |
| ·RGD复合材料浸提液的NGF活性检测 | 第39页 |
| ·实验结果和讨论 | 第39-43页 |
| ·RGD复合材料的NGF释放曲线 | 第39-40页 |
| ·RGD复合材料中NGF活性检测 | 第40-43页 |
| ·小结 | 第43-44页 |
| 第5章 NGF缓释神经导管修复大鼠坐骨神经缺损的动物实验 | 第44-54页 |
| ·实验材料 | 第44-45页 |
| ·RGD复合神经导管 | 第44页 |
| ·主要实验器材和试剂 | 第44-45页 |
| ·实验动物 | 第45页 |
| ·实验方法 | 第45-46页 |
| ·手术方法 | 第45-46页 |
| ·检测方法 | 第46页 |
| ·实验结果 | 第46-51页 |
| ·大体观察 | 第46-47页 |
| ·电生理检测 | 第47页 |
| ·小腿三头肌湿重恢复率测量 | 第47-48页 |
| ·组织学观察与图像分析 | 第48-51页 |
| ·讨论 | 第51-54页 |
| 第6章 结论 | 第54-55页 |
| 参考文献 | 第55-58页 |
| 致谢 | 第58-59页 |
| 附录: 攻读硕士学位期间发表的论文 | 第59页 |