| 缩略语表 | 第1-10页 |
| 中文摘要 | 第10-13页 |
| ABSTRACT | 第13-17页 |
| 前言 | 第17-19页 |
| 文献回顾 | 第19-43页 |
| 一、CD226 分子的基因和结构 | 第19-25页 |
| 1.C D226 的发现与命名 | 第19-20页 |
| 2.C D226 的基因 | 第20-22页 |
| ·人CD226 的基因 | 第20-21页 |
| ·小鼠CD226 的基因 | 第21-22页 |
| 3.C D226 的结构 | 第22-24页 |
| ·hCD226 的结构 | 第22-23页 |
| ·mCD226 的结构 | 第23-24页 |
| 4. 其他种属的CD226 分子 | 第24-25页 |
| 二、CD226 分子的存在形式 | 第25-29页 |
| 1. 可溶型跨膜分子的共性 | 第25-26页 |
| ·可溶型跨膜分子的产生 | 第25-26页 |
| ·可溶型跨膜分子的功能 | 第26页 |
| 2. 可溶型hCD226（sCD226） | 第26-29页 |
| ·sCD226 的发现和检测 | 第26-27页 |
| ·sCD226 的产生 | 第27-28页 |
| ·sCD226 在某些临床疾病中的意义 | 第28-29页 |
| 三、CD226 分子的表达和功能 | 第29-35页 |
| 1. CD226 的表达 | 第29-31页 |
| 2. CD226 的功能 | 第31-35页 |
| ·免疫突触 | 第31-32页 |
| ·细胞间粘附 | 第32-33页 |
| ·细胞的活化、增殖和分化 | 第33-34页 |
| ·细胞毒作用 | 第34-35页 |
| ·血小板的活化和聚集 | 第35页 |
| ·造血调控 | 第35页 |
| 四、细胞粘附分子在神经系统的表达和功能 | 第35-43页 |
| 1. 神经系统内已经发现的CAM | 第35-39页 |
| ·存在于神经系统内的CAM | 第36-38页 |
| ·神经系统的CAM参与突触发生 | 第38-39页 |
| 2. CD226 可能存在于神经系统的推论 | 第39-43页 |
| ·CD226 与存在于神经系统的CAM的相似性 | 第39-40页 |
| ·CD226 的配体 | 第40-43页 |
| 正文 | 第43-87页 |
| 实验一 CD226 分子在成年小鼠脑内的表达及其在小鼠生后发育过程中表达和分布的变化 | 第43-65页 |
| 1 材料 | 第43-44页 |
| ·动物 | 第43页 |
| ·抗体 | 第43-44页 |
| ·试剂 | 第44页 |
| ·仪器和软件 | 第44页 |
| 2 方法 | 第44-50页 |
| ·RT-PCR | 第44-45页 |
| ·Western blotting | 第45-47页 |
| ·免疫组织化学及免疫荧光染色 | 第47-49页 |
| ·电镜观察 | 第49-50页 |
| 3 结果 | 第50-62页 |
| ·CD226 mRNA在成年小鼠海马和小脑的表达 | 第50-51页 |
| ·CD226 蛋白在成年小鼠海马和小脑的表达 | 第51-52页 |
| ·CD226 分子在成年小鼠海马和小脑的分布 | 第52-59页 |
| ·CD226 分子在小鼠生后发育过程中表达和分布的变化 | 第59-62页 |
| 4 讨论 | 第62-65页 |
| 实验二 CD226 分子在CNS内可能参与突触识别的初步研究 | 第65-79页 |
| 1 材料 | 第65-66页 |
| ·动物和细胞 | 第65页 |
| ·抗体 | 第65页 |
| ·试剂 | 第65-66页 |
| ·仪器和软件 | 第66页 |
| 2 方法 | 第66-70页 |
| ·胎鼠海马神经元的分离 | 第66-67页 |
| ·免疫荧光染色 | 第67-68页 |
| ·细胞转染 | 第68-69页 |
| ·流式细胞分析 | 第69-70页 |
| ·Hela细胞转染后与新鲜分离的胎鼠海马神经元共培养 | 第70页 |
| 3 结果 | 第70-77页 |
| ·胎鼠海马神经元体外培养的形态学观察 | 第70-72页 |
| ·Hela细胞转染后的形态学观察 | 第72-75页 |
| ·转染后的Hela与海马神经元共培养的形态学观察 | 第75-77页 |
| 4 讨论 | 第77-79页 |
| 实验三 CD226 分子与细胞缺氧及缺血性脑血管疾病相关性的研究 | 第79-87页 |
| 1 材料 | 第79-80页 |
| ·动物和细胞 | 第79页 |
| ·抗体 | 第79页 |
| ·试剂 | 第79页 |
| ·仪器和软件 | 第79-80页 |
| 2 方法 | 第80-83页 |
| ·胎鼠海马神经元体外培养及细胞缺氧模型的建立 | 第80-81页 |
| ·免疫荧光染色 | 第81页 |
| ·细胞裂解及Western blotting | 第81-82页 |
| ·夹心ELISA法检测正常人及患者血清中sCD226 水平 | 第82-83页 |
| 3 结果 | 第83-85页 |
| ·缺氧不同时间后神经元形态学变化 | 第83-84页 |
| ·缺氧不同时间后神经元CD226 分子蛋白水平的变化 | 第84-85页 |
| ·正常人及患者血清中sCD226 分子表达水平的不同 | 第85页 |
| 4 讨论 | 第85-87页 |
| 小结 | 第87-88页 |
| 参考文献 | 第88-101页 |
| 个人简历和研究成果 | 第101-104页 |
| 致谢 | 第104页 |
