| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 第1章 引言 | 第14-36页 |
| 1.1 研究背景与内容 | 第14-19页 |
| 1.1.1 乙肝的研究现状 | 第14-16页 |
| 1.1.2 乙肝与磷脂的关系 | 第16页 |
| 1.1.3 磷脂的研究现状 | 第16-19页 |
| 1.1.4 本论文研究思路 | 第19页 |
| 1.2 高效液相色谱简介 | 第19-23页 |
| 1.2.1 反相高效液相色谱 | 第20页 |
| 1.2.2 液相色谱分离现象 | 第20-23页 |
| 1.2.3 超高效液相色谱(UHPLC) | 第23页 |
| 1.3 质谱简介 | 第23-28页 |
| 1.3.1 离子源 | 第24-26页 |
| 1.3.2 离子光学组件 | 第26页 |
| 1.3.3 QQQ质量分析器 | 第26-27页 |
| 1.3.4 检测器 | 第27页 |
| 1.3.5 QQQ的工作模式 | 第27-28页 |
| 1.4 高效液相色谱与质谱联用技术 | 第28-29页 |
| 1.5 数据统计分析方法 | 第29-33页 |
| 1.5.1 数据预处理 | 第29-30页 |
| 1.5.2 单变量统计分析 | 第30页 |
| 1.5.3 多变量统计分析 | 第30-33页 |
| 1.5.4 受试者工作特征曲线分析 | 第33页 |
| 1.6 本论文研究内容 | 第33-36页 |
| 第2章 基于UHPLC-MS的磷脂定性与定量分析方法优化 | 第36-76页 |
| 2.1 材料与方法 | 第36-38页 |
| 2.1.1 化学试剂 | 第36页 |
| 2.1.2 磷脂代谢物提取 | 第36-38页 |
| 2.1.3 UHPLC-MS系统 | 第38页 |
| 2.2 结果与讨论 | 第38-74页 |
| 2.2.1 UHPLC-MS检测条件优化 | 第38-41页 |
| 2.2.2 磷脂结构鉴定 | 第41-49页 |
| 2.2.3 磷脂定量分析 | 第49-52页 |
| 2.2.4 磷脂分析方法评价 | 第52-57页 |
| 2.2.5 不同生物样品的磷脂分析 | 第57-74页 |
| 2.3 小结 | 第74-76页 |
| 第3章 HBV感染和复制与宿主磷脂代谢物的关系 | 第76-104页 |
| 3.1 实验与材料 | 第76-81页 |
| 3.1.1 血清和细胞样品 | 第76页 |
| 3.1.2 基于UHPLC-MS的磷脂代谢物分析 | 第76-77页 |
| 3.1.3 胆碱代谢物分析 | 第77页 |
| 3.1.4 实时荧光定量PCR分析 | 第77-79页 |
| 3.1.5 HBV DNA复制水平检测 | 第79页 |
| 3.1.6 细胞siRNA转染 | 第79-80页 |
| 3.1.7 酶联免疫吸附试验(ELISA) | 第80页 |
| 3.1.8 Western Blotting分析 | 第80页 |
| 3.1.9 色谱图数据处理 | 第80-81页 |
| 3.2 实验结果 | 第81-100页 |
| 3.2.1 慢性乙肝患者的血清磷脂代谢物变化 | 第81-88页 |
| 3.2.2 HBV宿主细胞的磷脂代谢物变化 | 第88-94页 |
| 3.2.3 HBV宿主细胞磷脂合成与代谢酶的表达水平 | 第94-98页 |
| 3.2.4 HBV宿主细胞胆碱代谢物的变化 | 第98-99页 |
| 3.2.5 siRNA抑制PCYT1A和LPP1酶的表达对HBV复制的影响 | 第99-100页 |
| 3.3 讨论 | 第100-103页 |
| 3.3.1 HBV感染导致宿主磷脂代谢物发生改变 | 第100-101页 |
| 3.3.2 HBV感染导致宿主磷脂代谢物改变与磷脂合成与代谢酶相关 | 第101-102页 |
| 3.3.3 PCRT1A和LPP1表达上调促进磷脂酰胆碱的合成 | 第102-103页 |
| 3.3.4 下调PCYT1A和LPP1的表达可抑制HBV复制 | 第103页 |
| 3.4 小结 | 第103-104页 |
| 第4章 总结与展望 | 第104-106页 |
| 4.1 总结 | 第104-105页 |
| 4.2 展望 | 第105-106页 |
| 参考文献 | 第106-118页 |
| 附录A | 第118-124页 |
| 本论文中所用的英文缩写 | 第118-124页 |
| 致谢 | 第124-126页 |
| 作者简介及在学期间发表的学术论文与研究成果 | 第126页 |
