| 摘要 | 第3-10页 |
| ABSTRACT | 第10-17页 |
| 第1章 前言 | 第21-25页 |
| 1.1 缺血再灌注引起机体组织细胞或器官发生损伤 | 第21页 |
| 1.2 氧化应激反应参与骨骼肌缺血再灌注后的损伤 | 第21-22页 |
| 1.3 炎症反应参与骨骼肌缺血再灌注后的损伤 | 第22-23页 |
| 1.4 Lutein是一种有效的抗氧化应激和炎症反应的化合物 | 第23-25页 |
| 第2章 材料与方法 | 第25-43页 |
| 2.1 实验材料 | 第25-26页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第25页 |
| 2.1.2 实验试剂 | 第25-26页 |
| 2.2 实验仪器 | 第26-27页 |
| 2.3 实验方法 | 第27-43页 |
| 2.3.1 实验动物给药及分组 | 第27-28页 |
| 2.3.2 大鼠缺血再灌注手术模型的建立 | 第28页 |
| 2.3.3 骨骼肌组织切片、包埋以及H&E染色 | 第28-29页 |
| 2.3.4 检测标本的取样 | 第29-30页 |
| 2.3.5 丙二醛含量检测 | 第30-31页 |
| 2.3.6 活性氧水平检测 | 第31页 |
| 2.3.7 蛋白质羰基含量检测 | 第31-32页 |
| 2.3.8 蛋白质疏基含量检测 | 第32-33页 |
| 2.3.9 组织谷胱甘肽S转移酶活性检测 | 第33-34页 |
| 2.3.10 谷胱甘肽过氧化物酶活性检测 | 第34-35页 |
| 2.3.11 过氧化氢酶活性的测定 | 第35-36页 |
| 2.3.12 超氧化物岐化酶活性的测定 | 第36-37页 |
| 2.3.13 组织谷胱甘肽含量的测定 | 第37-39页 |
| 2.3.14 ELISA检测血清TNF-α,IL-6和IL-1β水平 | 第39页 |
| 2.3.15 Western blot检测组织Nrf-2、NF-κB和COX-2的表达 | 第39-42页 |
| 2.3.16 统计学处理 | 第42-43页 |
| 第3章 结果 | 第43-53页 |
| 3.1 叶黄素处理对缺血再灌注大鼠骨骼肌病理结构的影响 | 第43-44页 |
| 3.2 叶黄素通过降低脂质体氧化应激反应减轻大鼠骨骼肌缺血再灌注损伤 | 第44-47页 |
| 3.2.1 叶黄素处理对缺血再灌注大鼠骨骼肌MDA含量的影响 | 第44-45页 |
| 3.2.2 叶黄素处理对缺血再灌注大鼠骨骼肌ROS生成量的影响 | 第45-46页 |
| 3.2.3 叶黄素处理对缺血再灌注大鼠骨骼肌蛋白羰基化水平的影响 | 第46-47页 |
| 3.2.4 叶黄素处理对缺血再灌注大鼠骨骼肌蛋白巯基化水平的影响 | 第47页 |
| 3.3 叶黄素通过增强抗氧化能力减轻大鼠骨骼肌缺血再灌注损伤 | 第47-50页 |
| 3.3.1 叶黄素处理对缺血再灌注大鼠骨骼肌抗氧化酶活性的影响 | 第47-49页 |
| 3.3.2 叶黄素处理对缺血再灌注大鼠骨骼肌Nrf-2转录因子表达的影响 | 第49-50页 |
| 3.4 叶黄素通过抑制过度炎症反应减轻大鼠骨骼肌缺血再灌注损伤 | 第50-53页 |
| 3.4.1 叶黄素处理对缺血再灌注大鼠骨骼肌转录因子NF-κB表达的影响 | 第50页 |
| 3.4.2 叶黄素处理对缺血再灌注大鼠骨骼肌COX-2表达的影响 | 第50-51页 |
| 3.4.3 叶黄素处理对缺血再灌注大鼠骨骼肌炎性细胞因子表达水平的影响 | 第51-53页 |
| 第4章 讨论 | 第53-59页 |
| 第5章 结论 | 第59-60页 |
| 参考文献 | 第60-70页 |
| 综述 | 第70-116页 |
| 参考文献 | 第89-116页 |
| 缩写词简表 | 第116-117页 |
| 表序 | 第117-118页 |
| 图序 | 第118-119页 |
| 已发表的论文和主要成果 | 第119-120页 |
| 致谢 | 第120-121页 |
