| 中文摘要 | 第4-8页 |
| Abstract | 第8-12页 |
| 符号说明 | 第17-19页 |
| 前言 | 第19-22页 |
| 研究现状、成果 | 第19-20页 |
| 研究目的、方法 | 第20-22页 |
| 一、母体孕期、哺乳期碘过量对子代的影响 | 第22-51页 |
| 1.1 对象和方法 | 第23-30页 |
| 1.1.1 主要试剂 | 第23-24页 |
| 1.1.2 主要仪器 | 第24-25页 |
| 1.1.3 主要试剂盒 | 第25-26页 |
| 1.1.4 主要溶液的配制 | 第26-30页 |
| 1.2 方法 | 第30-38页 |
| 1.2.1 实验对象及分组 | 第30页 |
| 1.2.2 子代大鼠尿碘中位数的测定 | 第30-31页 |
| 1.2.3 子代大鼠血清甲状腺激素和自身抗体水平的测定 | 第31-32页 |
| 1.2.4 子代大鼠甲状腺SPECT实验 | 第32页 |
| 1.2.5 子代大鼠Morris行为学实验 | 第32-33页 |
| 1.2.6 子代大鼠超声心动实验 | 第33页 |
| 1.2.7 子代大鼠体重的测定 | 第33页 |
| 1.2.8 子代大鼠甲状腺组织常规HE染色 | 第33-34页 |
| 1.2.9 子代大鼠甲状腺电镜检测 | 第34页 |
| 1.2.10 Western blotting检测子代大鼠甲状腺蛋白的表达 | 第34-37页 |
| 1.2.11 qPCR检测子代大鼠甲状腺mRNA表达 | 第37-38页 |
| 1.3 统计学方法 | 第38-39页 |
| 1.4 结果 | 第39-46页 |
| 1.4.1 子代大鼠尿碘中位数的检测结果 | 第39页 |
| 1.4.2 子代大鼠血清甲状腺激素水平的测定结果 | 第39-40页 |
| 1.4.3 子代大鼠甲状腺SPECT检测结果 | 第40-41页 |
| 1.4.4 子代大鼠甲状腺Morris行为学实验结果 | 第41-42页 |
| 1.4.5 子代大鼠超声心动实验结果 | 第42页 |
| 1.4.6 子代大鼠体重的测定结果 | 第42-43页 |
| 1.4.7 子代大鼠甲状腺HE染色 | 第43-44页 |
| 1.4.8 子代大鼠甲状腺电镜检测结果 | 第44-45页 |
| 1.4.9 子代大鼠甲状腺Western blotting检测TRα1、TRβ1蛋白表达结果 | 第45-46页 |
| 1.4.10 qPCR检测子代大鼠甲状腺Dio1 mRNA表达的结果 | 第46页 |
| 1.5 讨论 | 第46-50页 |
| 1.5.1 子代碘致性甲状腺疾病大鼠尿碘中位数变化 | 第46-47页 |
| 1.5.2 子代碘致性甲状腺疾病大鼠甲状腺激素及自身抗体水平变化 | 第47页 |
| 1.5.3 子代碘致性甲状腺疾病大鼠体重的变化 | 第47页 |
| 1.5.4 子代碘致性甲状腺疾病大鼠甲状腺摄取率变化 | 第47-48页 |
| 1.5.5 子代碘致性甲状腺疾病大鼠脑学习记忆能力变化 | 第48页 |
| 1.5.6 子代碘致性甲状腺疾病大鼠心脏功能变化 | 第48页 |
| 1.5.7 子代大鼠甲状腺形态学变化 | 第48-49页 |
| 1.5.8 子代大鼠甲状腺超微结构变化 | 第49页 |
| 1.5.9 子代碘致性甲状腺疾病大鼠甲状腺激素受体表达变化 | 第49-50页 |
| 1.5.10 子代大鼠甲状腺Dio1 mRNA表达 | 第50页 |
| 小结 | 第50-51页 |
| 二、高碘调整为适碘和或补充 1,25(OH)_2D_3对子代的影响 | 第51-78页 |
| 2.1 材料和方法 | 第53页 |
| 2.1.1 主要试剂 | 第53页 |
| 2.1.2 主要仪器 | 第53页 |
| 2.1.3 主要溶液的配制 | 第53页 |
| 2.2 方法 | 第53-57页 |
| 2.2.1 实验对象及分组 | 第53-54页 |
| 2.2.2 干预前体重,血清激素、自身抗体、VD3水平测定,HE染色 | 第54页 |
| 2.2.3 不同处理组子代大鼠尿碘中位数测定 | 第54页 |
| 2.2.4 不同处理组子代大鼠甲状腺SPECT检测 | 第54页 |
| 2.2.5 不同处理组子代大鼠体重的测定 | 第54页 |
| 2.2.6 不同处理组子代血清甲状腺激素水平的测定 | 第54-55页 |
| 2.2.7 不同处理组子代大鼠甲状腺HE染色 | 第55页 |
| 2.2.8 qPCR检测不同处理组子代大鼠甲状腺 IL-17、Dnmt1、Dnmt3a、Dnmt3b mRNA表达和脾脏 IL-17、IFNγ、IL-10 mRNA水平测定 | 第55页 |
| 2.2.9 流式细胞术检测不同处理组子代大鼠脾脏淋巴细胞增殖能力 | 第55-56页 |
| 2.2.10 不同处理组子代大鼠甲状腺免疫荧光共定位检测 | 第56页 |
| 2.2.11 不同处理组子代大鼠甲状腺激素受体表达 | 第56-57页 |
| 2.3 统计 | 第57页 |
| 2.4 结果 | 第57-72页 |
| 2.4.1 干预前子代大鼠体重,血清甲状腺激素、自身抗体水平和VD_3,HE染色 | 第57-59页 |
| 2.4.2 不同处理组子代大鼠尿碘中位数的检测结果 | 第59-60页 |
| 2.4.3 不同处理后子代大鼠甲状腺SPECT测定结果 | 第60-62页 |
| 2.4.4 不同处理后子代大鼠体重变化结果 | 第62页 |
| 2.4.5 不同处理后子代大鼠血清甲状腺激素和自身甲状腺自身抗体水平 | 第62-63页 |
| 2.4.6 不同处理后子代大鼠甲状腺HE染色结果 | 第63-64页 |
| 2.4.7 不同处理后子代大鼠甲状腺细胞因子表达结果 | 第64-65页 |
| 2.4.8 不同处理后子代大鼠甲状腺Dnmt1、Dnmt3a、Dnmt3b mRNA的表达结果 | 第65-66页 |
| 2.4.9 不同处理后子代大鼠脾脏增殖能力结果 | 第66-67页 |
| 2.4.10 不同处理组子代大鼠脾脏IL-17、IFN γ、IL-10 mRNA表达结果 | 第67-68页 |
| 2.4.11 不同处理后子代大鼠脾脏Dnmt1、Dnmt3a、Dnmt3b mRNA的表达结果 | 第68-69页 |
| 2.4.12 不同处理后子代大鼠甲状腺免疫荧光共定位表达 | 第69-71页 |
| 2.4.13 不同处理后子代大鼠甲状腺激素受体TRα1、TRβ1蛋白表达 | 第71-72页 |
| 2.5 讨论 | 第72-77页 |
| 2.5.1 子代在90天时干预前甲状腺功能变化 | 第72-73页 |
| 2.5.2 不同处理后子代大鼠尿碘中位数变化 | 第73页 |
| 2.5.3 不同处理后子代大鼠甲状腺摄取率变化 | 第73页 |
| 2.5.4 不同处理后子代大鼠体重变化 | 第73-74页 |
| 2.5.5 不同处理后子代大鼠甲状腺激素及自身抗体水平变化 | 第74页 |
| 2.5.6 不同处理后子代大鼠甲状腺炎症反应 | 第74页 |
| 2.5.7 不同处理后子代大鼠脾脏细胞因子表达变化 | 第74-75页 |
| 2.5.8 不同处理后子代大鼠甲状腺和脾脏DNA甲基转移酶变化 | 第75-76页 |
| 2.5.9 不同处理后子代大鼠甲状腺CD4~+和TRβ1、CD4~+和VDR共表达 | 第76-77页 |
| 2.5.10 不同处理后子代大鼠甲状腺激素受体表达变化 | 第77页 |
| 小结 | 第77-78页 |
| 结论 | 第78-79页 |
| 参考文献 | 第79-89页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第89-90页 |
| 综述 维生素D作用机制的研究进展 | 第90-98页 |
| 综述参考文献 | 第94-98页 |
| 致谢 | 第98-99页 |
| 个人简历 | 第99页 |
