| 中文摘要 | 第8-10页 |
| ABSTRACT | 第10-11页 |
| 本论文缩略词表 | 第13-15页 |
| 第一章 引言 | 第15-40页 |
| 1.1 干旱胁迫 | 第15-20页 |
| 1.1.1 干旱胁迫现状及研究意义 | 第15页 |
| 1.1.2 干旱胁迫对植物的影响 | 第15-17页 |
| 1.1.3 植物的抗旱机制 | 第17-18页 |
| 1.1.4 植物干旱胁迫信号转导 | 第18-20页 |
| 1.2 拟南芥气孔的研究 | 第20-28页 |
| 1.2.1 气孔运动和机制 | 第21-22页 |
| 1.2.2 干旱胁迫下气孔运动的调控网络 | 第22-26页 |
| 1.2.3 其他因素对气孔运动的调节 | 第26-28页 |
| 1.3 一氧化氮在植物中的研究 | 第28-36页 |
| 1.3.1 一氧化氮的合成 | 第29-32页 |
| 1.3.2 植物体内一氧化氮的清除 | 第32页 |
| 1.3.3 一氧化氮信号转导通路 | 第32-34页 |
| 1.3.4 一氧化氮在植物中的功能 | 第34-36页 |
| 1.3.5 一氧化氮的释放和清除剂 | 第36页 |
| 1.4 一氧化氮与H_2O_2在植物体内的相互作用研究 | 第36-39页 |
| 1.4.1 H_2O_2与一氧化氮相互作用参与植物生长发育过程 | 第37-38页 |
| 1.4.2 H_2O_2和一氧化氮相互作用参与植物环境应答过程 | 第38-39页 |
| 1.5 本研究的目的和意义 | 第39-40页 |
| 第二章 材料和方法 | 第40-60页 |
| 2.1 酵母材料和培养 | 第40-41页 |
| 2.2 酵母突变体筛选 | 第41-42页 |
| 2.3 植物材料和培养 | 第42-43页 |
| 2.4 拟南芥突变体鉴定 | 第43-44页 |
| 2.5 拟南芥RNA的提取和荧光定量PCR | 第44-46页 |
| 2.6 质粒构建和转化 | 第46-51页 |
| 2.7 酵母感受态细胞的制备及外源质粒的转化 | 第51-53页 |
| 2.8 酵母总蛋白的提取方法 | 第53-54页 |
| 2.9 拟南芥气孔保卫细胞一氧化氮含量检测 | 第54-56页 |
| 2.10 一氧化氮合成酶活性检测 | 第56页 |
| 2.11 精氨酸含量检测 | 第56-57页 |
| 2.12 气孔相关指标检测 | 第57页 |
| 2.13 叶片失水率检测 | 第57-58页 |
| 2.14 热成像技术 | 第58页 |
| 2.15 本论文所用引物 | 第58页 |
| 2.16 本论文所用引物 | 第58-60页 |
| 第三章 结果与分析 | 第60-94页 |
| 3.1 酵母突变体筛选 | 第60-68页 |
| 3.2 酵母TUP1参与H_2O_2诱导的NO积累和细胞凋亡 | 第68-70页 |
| 3.3 拟南芥WDR5a在酵母Δtupl中的功能互补实验 | 第70-76页 |
| 3.4 WDR5a功能缺失突变体的鉴定 | 第76-78页 |
| 3.5 WDR5a通过调控NOS活性参与了H_2O_2诱导保卫细胞NO的积累和气孔关闭 | 第78-82页 |
| 3.6 WDR5a不是通过改变精氨酸含量或作用于NO下游调控气孔运动 | 第82-84页 |
| 3.7 WDR5a通过调节NO积累参与了ABA介导的气孔关闭 | 第84-85页 |
| 3.8 WDR5a通过调控气孔运动参与植物干旱胁迫应答胁 | 第85-89页 |
| 3.9 WDR5a调节植物干旱胁迫响应基因的表达 | 第89-91页 |
| 3.10 WDR5a可能不影响硝酸还原酶介导的NO生成 | 第91-94页 |
| 第四章 讨论 | 第94-99页 |
| 4.1 酵母突变体筛选结果分析 | 第94-95页 |
| 4.2 WDR5a通过调控NOS活性影响NO积累的机制 | 第95-97页 |
| 4.3 H_2O_2诱导植物NO积累的作用机制 | 第97页 |
| 4.4 WDR5a对干旱响应基因表达的调控 | 第97-98页 |
| 4.5 WDR5a在植物生长发育中的作用 | 第98-99页 |
| 参考文献 | 第99-110页 |
| 在读期间发表和投稿的论文 | 第110-111页 |
| 致谢 | 第111页 |
