| 致谢 | 第3-4页 |
| 摘要 | 第4-6页 |
| abstract | 第6-7页 |
| 第一章 绪论 | 第10-17页 |
| 1.1 DNA分子标记 | 第10-12页 |
| 1.1.1 常用分子标记 | 第10-11页 |
| 1.1.2 SSR分子标记 | 第11-12页 |
| 1.2 基于分子标记的群体遗传结构分析 | 第12-13页 |
| 1.2.1 基本概念及意义 | 第12页 |
| 1.2.2 群体遗传结构的影响因素 | 第12-13页 |
| 1.2.3 群体遗传结构与保护策略的制定 | 第13页 |
| 1.3 木犀属植物的研究进展 | 第13-16页 |
| 1.3.1 木犀属其他植物研究进展 | 第13-14页 |
| 1.3.2 短丝木犀研究进展 | 第14-16页 |
| 1.4 研究目的及意义 | 第16-17页 |
| 第二章 研究材料与方法 | 第17-25页 |
| 2.1 实验材料 | 第17-20页 |
| 2.1.1 SSR引物 | 第17页 |
| 2.1.2 供试材料 | 第17-20页 |
| 2.2 研究方法 | 第20-23页 |
| 2.2.1 总DNA提取及检测 | 第20-21页 |
| 2.2.2 SSR-PCR反应体系优化及引物筛选 | 第21-23页 |
| 2.2.3 SSR-PCR扩增产物检测 | 第23页 |
| 2.3 数据处理及统计分析 | 第23-25页 |
| 2.3.1 原始数据处理 | 第23页 |
| 2.3.2 遗传结构分析 | 第23-24页 |
| 2.3.3 遗传聚类分析 | 第24-25页 |
| 第三章 结果与分析 | 第25-43页 |
| 3.1 短丝木犀的DNA提取及检测 | 第25-26页 |
| 3.1.1 1%琼脂糖凝胶电泳检测比较 | 第25页 |
| 3.1.2 紫外分光光度计的检测比较 | 第25-26页 |
| 3.2 短丝木犀SSR引物筛选及PCR扩增 | 第26-29页 |
| 3.2.1 正交实验的直观分析 | 第26-27页 |
| 3.2.2 最佳优化体系筛选短丝木犀引物 | 第27-28页 |
| 3.2.3 两种引物筛选方法的对比分析 | 第28页 |
| 3.2.4 引物的多态性分析 | 第28-29页 |
| 3.3 短丝木犀群体的遗传结构分析 | 第29-35页 |
| 3.3.1 哈迪-温伯格平衡检测 | 第29-30页 |
| 3.3.2 SSR标记在短丝木犀物种水平的遗传多样性 | 第30-31页 |
| 3.3.3 短丝木犀群体水平的遗传多样性 | 第31-33页 |
| 3.3.4 短丝木犀群体间的遗传分化与基因交流 | 第33-34页 |
| 3.3.5 瓶颈效应分析 | 第34-35页 |
| 3.4 短丝木犀群体的遗传距离与聚类分析 | 第35-40页 |
| 3.4.1 遗传距离与地理距离相关性分析 | 第35-36页 |
| 3.4.2 聚类分析 | 第36-37页 |
| 3.4.3 Strcture分析 | 第37-38页 |
| 3.4.4 主成分分析(PCoA) | 第38-40页 |
| 3.5 短丝木犀种质资源保护 | 第40-43页 |
| 3.5.1 短丝木犀的受危因素 | 第40-41页 |
| 3.5.2 短丝木犀的保护策略 | 第41-43页 |
| 第四章 结论与展望 | 第43-47页 |
| 4.1 短丝木犀基因组DNA的提取 | 第43页 |
| 4.2 SSR反应体系的优化及引物的筛选 | 第43-44页 |
| 4.2.1 影响反应体系的因素 | 第43-44页 |
| 4.2.2 传统筛选与引物快速筛选的对比 | 第44页 |
| 4.3 短丝木犀群体的遗传结构分析 | 第44-45页 |
| 4.4 短丝木犀群体的遗传距离与聚类分析 | 第45-46页 |
| 4.5 短丝木犀资源的保护与利用 | 第46-47页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文 | 第47-48页 |
| 参考文献 | 第48-53页 |