| 摘要 | 第4-6页 |
| abstract | 第6-7页 |
| 引言 | 第12-21页 |
| 0.1 概述 | 第12-13页 |
| 0.2 糖尿病现状 | 第13页 |
| 0.3 多酚类物质的结构 | 第13-14页 |
| 0.4 多酚类化合物对糖尿病的积极作用 | 第14-20页 |
| 0.5 课题研究的意义 | 第20-21页 |
| 第1章 黑树莓多酚对小鼠的降血糖作用 | 第21-29页 |
| 1.1 试验目的 | 第21页 |
| 1.2 试验方案 | 第21页 |
| 1.3 试验材料 | 第21-22页 |
| 1.4 基本试验方法 | 第22-23页 |
| 1.4.1 BRB饲料配制 | 第22页 |
| 1.4.2 实验动物模型建立及试验分组 | 第22-23页 |
| 1.4.3 实验动物分组及给药 | 第23页 |
| 1.4.4 动物生长情况观察 | 第23页 |
| 1.4.5 糖尿病小鼠血糖测定 | 第23页 |
| 1.4.6 糖耐量的测定(IPGTT法) | 第23页 |
| 1.5 分析 | 第23-24页 |
| 1.6 结果 | 第24-27页 |
| 1.6.1 造模结果及成功率 | 第24页 |
| 1.6.2 一般情况 | 第24页 |
| 1.6.3 BRB给予对于小鼠空腹血糖的影响 | 第24-26页 |
| 1.6.4 BRB给予对于小鼠腹腔注射糖耐量(IPGTT)的影响 | 第26-27页 |
| 1.7 讨论 | 第27-29页 |
| 第2章 黑树莓多酚对糖尿病实验小鼠降血糖作用的机制分析 | 第29-37页 |
| 2.1 试验目的 | 第29页 |
| 2.2 试验方案 | 第29-30页 |
| 2.3 试验材料、试剂与仪器设备 | 第30-31页 |
| 2.3.1 试验动物同试验一 | 第30页 |
| 2.3.2 试验试剂 | 第30页 |
| 2.3.3 仪器设备 | 第30-31页 |
| 2.4 试验方法 | 第31-33页 |
| 2.4.1 取材方法 | 第31页 |
| 2.4.2 骨骼肌组织总蛋白提取及蛋白含量测定 | 第31页 |
| 2.4.3 WesternBlot | 第31页 |
| 2.4.4 骨骼肌中总RNA提取及cDNA合成 | 第31-32页 |
| 2.4.5 引物设计及Real-TimePCR | 第32-33页 |
| 2.5 分析 | 第33-34页 |
| 2.6 结果 | 第34-36页 |
| 2.6.1 BRB对糖尿病小鼠胰岛素信号通路蛋白表达影响 | 第34-35页 |
| 2.6.2 BRB对糖尿病小鼠骨骼肌GLUT4及AMPKa1转录水平影响 | 第35-36页 |
| 2.7 小结 | 第36-37页 |
| 第3章 黑树莓多酚对糖尿病实验小鼠糖尿病伴发症的缓解能力分析 | 第37-46页 |
| 3.1 试验目的 | 第37页 |
| 3.2 试验方案 | 第37-38页 |
| 3.3 试剂与仪器设备 | 第38页 |
| 3.3.1 试验动物同试验一 | 第38页 |
| 3.3.2 试验试剂 | 第38页 |
| 3.4 基本试验方法 | 第38-41页 |
| 3.4.1 BRB对糖尿病小鼠血脂变化影响 | 第38-39页 |
| 3.4.2 BRB对糖尿病小鼠脏器指数的影响 | 第39页 |
| 3.4.3 BRB对糖尿病小鼠肝脏炎症的影响 | 第39-41页 |
| 3.5 分析 | 第41页 |
| 3.6 结果 | 第41-44页 |
| 3.6.1 BRB对糖尿病小鼠血脂变化影响 | 第41-43页 |
| 3.6.2 BRB对糖尿病小鼠脏器指数的影响 | 第43-44页 |
| 3.7 小结 | 第44-46页 |
| 第4章 结论 | 第46-48页 |
| 致谢 | 第48-49页 |
| 参考文献 | 第49-55页 |
| 攻读学位期间发表学术论文及参加科研情况 | 第55-56页 |
