| 摘要 | 第7-11页 |
| ABSTRACT | 第11-14页 |
| 前言 | 第15-18页 |
| 第一章 UPLC/PDA-Q-TOF-MS分析补骨脂中化学成分 | 第18-24页 |
| 1 实验材料与仪器 | 第18-19页 |
| 1.1 药品与试剂 | 第18页 |
| 1.2 仪器 | 第18-19页 |
| 2 实验方法 | 第19-20页 |
| 2.1 补骨脂醇提物的制备 | 第19页 |
| 2.2 色谱质谱条件 | 第19-20页 |
| 3 结果 | 第20-23页 |
| 4 讨论 | 第23-24页 |
| 第二章 基于UPLC/QTOF-MS技术的补骨脂醇提物对大鼠血浆代谢组学研究 | 第24-43页 |
| 1 实验材料与仪器 | 第24-25页 |
| 1.1 实验药物与试剂 | 第24页 |
| 1.2 实验动物 | 第24-25页 |
| 1.3 仪器 | 第25页 |
| 2 试验方法 | 第25-27页 |
| 2.1 动物分组与给药 | 第25页 |
| 2.2 血样采集与处理 | 第25页 |
| 2.3 组织样品的采集 | 第25-26页 |
| 2.4 质控样品的制备 | 第26页 |
| 2.5 色谱质谱条件 | 第26-27页 |
| 2.6 数据处理与分析 | 第27页 |
| 2.7 生物标志物的鉴别 | 第27页 |
| 3 结果 | 第27-40页 |
| 3.1 血常规、血生化检测结果 | 第27-30页 |
| 3.2 病理组织学结果 | 第30-31页 |
| 3.3 方法学验证结果 | 第31-32页 |
| 3.4 EEFP给药后各组大鼠血清UPLC-MS代谢指纹图谱宏观比较 | 第32-34页 |
| 3.5 EEFP给药后各组大鼠代谢组学分析 | 第34-35页 |
| 3.6 差异性内源性物质的筛选 | 第35-38页 |
| 3.7 差异性内源性物质在空白对照组与EEFP给药组的含量 | 第38-40页 |
| 4 讨论 | 第40-43页 |
| 第三章 基于UPLC/QTOF-MS技术的补骨脂水提物对大鼠血浆代谢组学研究 | 第43-56页 |
| 1 实验材料与仪器 | 第43-44页 |
| 1.1 实验药物与试剂 | 第43页 |
| 1.2 实验动物 | 第43-44页 |
| 1.3 仪器 | 第44页 |
| 2 试验方法 | 第44-47页 |
| 2.1 补骨脂水提物的制备 | 第44-45页 |
| 2.2 动物分组与给药 | 第45页 |
| 2.3 血样采集与处理 | 第45-46页 |
| 2.4 色谱质谱条件 | 第46-47页 |
| 2.5 数据处理与分析 | 第47页 |
| 2.6 生物标志物的鉴别 | 第47页 |
| 3 结果 | 第47-54页 |
| 3.1 补骨脂水提物对大鼠血常规、血生化的影响 | 第47-49页 |
| 3.2 补骨脂水提物给药组与空白组PLS-DA分析 | 第49-54页 |
| 4 讨论 | 第54-56页 |
| 第四章 基于UPLC-PDA-QTOF/MS技术研究补骨脂酚在大鼠体内代谢形式 | 第56-71页 |
| 1 实验材料与仪器 | 第57页 |
| 1.1 实验药物与试剂 | 第57页 |
| 1.2 实验动物 | 第57页 |
| 1.3 仪器 | 第57页 |
| 2 试验方法 | 第57-59页 |
| 2.1 动物分组与给药 | 第57页 |
| 2.2 生物样品采集 | 第57-58页 |
| 2.3 样品处理 | 第58页 |
| 2.4 色谱质谱条件 | 第58-59页 |
| 2.5 数据处理 | 第59页 |
| 3 实验结果 | 第59-69页 |
| 3.1 补骨脂酚的质谱裂解途径和规律 | 第59-61页 |
| 3.2 补骨脂酚大鼠血浆、尿液、胆汁和粪便中代谢产物的鉴定 | 第61-68页 |
| 3.3 补骨脂酚大鼠体内代谢途径推测 | 第68-69页 |
| 3.4 代谢产物M1和M5大鼠血浆药时曲线 | 第69页 |
| 4 讨论 | 第69-71页 |
| 全文总结 | 第71-72页 |
| 参考文献 | 第72-79页 |
| 致谢 | 第79-80页 |
| 攻读硕士期间主要的学术成果 | 第80页 |
