| 摘要 | 第4-6页 |
| abstract | 第6-7页 |
| 主要符号表 | 第8-14页 |
| 引言 | 第14-15页 |
| 1 文献综述 | 第15-33页 |
| 1.1 海洋致病菌 | 第15-20页 |
| 1.1.1 海洋致病菌的概念 | 第15页 |
| 1.1.2 副溶血性弧菌 | 第15-17页 |
| 1.1.2.1 副溶血性弧菌毒力因子 | 第16-17页 |
| 1.1.2.2 副溶血性弧菌的流行状况 | 第17页 |
| 1.1.3 创伤弧菌 | 第17-18页 |
| 1.1.4 海洋致病菌的检测方法 | 第18页 |
| 1.1.5 最大可能计数法(MPN) | 第18-19页 |
| 1.1.6 聚合酶链式反应(PCR) | 第19页 |
| 1.1.7 环介导等温扩增技术(LAMP) | 第19-20页 |
| 1.1.8 酶联免疫吸附法(ELISA) | 第20页 |
| 1.2 二维石墨烯材料 | 第20-24页 |
| 1.2.1 石墨相氮化碳的概述及其检测应用 | 第20-22页 |
| 1.2.2 氧化石墨烯的概述及其检测应用 | 第22-24页 |
| 1.3 金标银染技术 | 第24-26页 |
| 1.3.1 金标银染技术的基本概念及原理 | 第24-25页 |
| 1.3.2 金标银染技术在检测领域的应用 | 第25-26页 |
| 1.4 电化学发光 | 第26-30页 |
| 1.4.1 电化学发光概念 | 第26-27页 |
| 1.4.2 电化学发光基本原理 | 第27页 |
| 1.4.3 三联吡啶钌发光原理 | 第27-28页 |
| 1.4.4 鲁米诺发光原理 | 第28-29页 |
| 1.4.5 ECL在致病菌检测中的应用 | 第29-30页 |
| 1.5 阳极溶出伏安法与快速扫描溶出伏安法 | 第30-33页 |
| 1.5.1 阳极溶出伏安法原理及应用 | 第30-31页 |
| 1.5.2 快速扫描溶出伏安法原理及应用 | 第31-33页 |
| 2 基于“圣诞树式”GLSS的VP可视化检测 | 第33-48页 |
| 2.1 引言 | 第33-34页 |
| 2.2 实验部分 | 第34-38页 |
| 2.2.1 主要仪器与试剂 | 第34页 |
| 2.2.2 主要溶液的配制 | 第34-35页 |
| 2.2.3 g-C_3N_4的合成 | 第35-36页 |
| 2.2.4 纳米金的合成 | 第36页 |
| 2.2.5 dAb-AuNPs@g-C_3N_4的合成 | 第36-37页 |
| 2.2.6 固相支持物的硅烷化 | 第37页 |
| 2.2.7 “圣诞树式”免疫反应 | 第37-38页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第38-47页 |
| 2.3.1 实验原理 | 第38-39页 |
| 2.3.2 传感器的可行性 | 第39-40页 |
| 2.3.3 实验条件的优化 | 第40-42页 |
| 2.3.3.1 反应时间的优化 | 第40页 |
| 2.3.3.2 反应温度的优化 | 第40-41页 |
| 2.3.3.3 cAb浓度的优化 | 第41-42页 |
| 2.3.3.4 银染时间的优化 | 第42页 |
| 2.3.4 线性及灵敏度 | 第42-45页 |
| 2.3.5 传感器特异性研究 | 第45-46页 |
| 2.3.6 传感器的稳定性、重现性研究 | 第46页 |
| 2.3.7 免疫传感器的实际应用 | 第46-47页 |
| 2.4 本章小结 | 第47-48页 |
| 3 法拉第笼式电化学免疫传感器检测副溶血性弧菌 | 第48-65页 |
| 3.1 引言 | 第48-50页 |
| 3.2 实验部分 | 第50-53页 |
| 3.2.1 试剂、材料及仪器 | 第50页 |
| 3.2.2 主要溶液的配制 | 第50-51页 |
| 3.2.3 纳米银的制备 | 第51页 |
| 3.2.4 氨基化Fe_3O_4的合成 | 第51页 |
| 3.2.5 AgNPs@GO的合成 | 第51页 |
| 3.2.6 捕获单元(cAb@Fe_3O_4)和检测单元(AgNPs@GO-dAb)的制备 | 第51-52页 |
| 3.2.7 电化学免疫传感器的制备 | 第52页 |
| 3.2.8 电化学测试 | 第52-53页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第53-64页 |
| 3.3.1 电化学传感器的原理 | 第53页 |
| 3.3.2 材料表征 | 第53-56页 |
| 3.3.2.1 GO和AgNPs@GO的表征 | 第53-55页 |
| 3.3.2.2 氨基化Fe_3O_4的表征 | 第55-56页 |
| 3.3.3 法拉第笼式免疫传感器的构建及表征 | 第56-58页 |
| 3.3.3.1 传感器层层组装 | 第56-58页 |
| 3.3.3.2 传感器的可行性 | 第58页 |
| 3.3.4 测定条件的优化 | 第58-61页 |
| 3.3.4.1 cAb浓度的优化 | 第58-59页 |
| 3.3.4.2 孵育pH的优化 | 第59-60页 |
| 3.3.4.3 检测单元的最佳比例 | 第60页 |
| 3.3.4.4 检测单元的最佳孵育温度 | 第60-61页 |
| 3.3.5 VP检测 | 第61-63页 |
| 3.3.6 选择性 | 第63页 |
| 3.3.7 稳定性与重现性 | 第63-64页 |
| 3.3.8 实际样品分析 | 第64页 |
| 3.4 本章小结 | 第64-65页 |
| 4 基于FSSV和ECL技术的双通道免疫传感器检测创伤弧菌 | 第65-86页 |
| 4.1 引言 | 第65-67页 |
| 4.2 实验部分 | 第67-70页 |
| 4.2.1 试剂及材料 | 第67页 |
| 4.2.2 仪器 | 第67页 |
| 4.2.3 主要溶液的配制 | 第67-68页 |
| 4.2.4 VV菌株培养及实验样品的制备 | 第68页 |
| 4.2.5 AgNPs及g-C_3N_4的合成 | 第68页 |
| 4.2.6 氨基化Fe_3O_4与AgNPs@g-C_3N_4的合成 | 第68页 |
| 4.2.7 捕获单元(cAb@Fe_3O_4)和检测单元(AgNPs@g-C_3N_4-dAb)的制备 | 第68-69页 |
| 4.2.8 双通道免疫传感器的制备 | 第69页 |
| 4.2.9 电化学和电化学发光测试 | 第69-70页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第70-85页 |
| 4.3.1 双通道免疫传感器的原理 | 第70页 |
| 4.3.2 材料表征 | 第70-73页 |
| 4.3.3 双通道免疫传感器的构建、表征 | 第73-75页 |
| 4.3.4 传感器的可行性 | 第75-79页 |
| 4.3.4.1 传感器的发光可行性 | 第75-76页 |
| 4.3.4.2 传感器的发光稳定性 | 第76-77页 |
| 4.3.4.3 ASV可行性 | 第77-78页 |
| 4.3.4.4 溶出测试液探究 | 第78页 |
| 4.3.4.5 快速扫描伏溶出安法 | 第78-79页 |
| 4.3.5 测定条件的优化 | 第79-81页 |
| 4.3.5.1 孵育pH的优化 | 第79-80页 |
| 4.3.5.2 K_2S_2O_8优化 | 第80-81页 |
| 4.3.6 VV检测 | 第81-84页 |
| 4.3.7 选择性 | 第84页 |
| 4.3.8 稳定性与重现性 | 第84页 |
| 4.3.9 实际样品分析 | 第84-85页 |
| 4.4 本章小结 | 第85-86页 |
| 5 结论和展望 | 第86-88页 |
| 5.1 结论 | 第86-87页 |
| 5.2 展望 | 第87-88页 |
| 参考文献 | 第88-98页 |
| 在学研究成果 | 第98-100页 |
| 致谢 | 第100页 |
