摘要 | 第3-5页 |
Abstract | 第5-7页 |
第一章 前言 | 第12-16页 |
第二章 CHP纳米粒子的制备及其载药研究 | 第16-24页 |
2.1 试剂和仪器 | 第16页 |
2.1.1 实验试剂 | 第16页 |
2.1.2 实验仪器 | 第16页 |
2.2 实验方法 | 第16-18页 |
2.2.1 CHP纳米粒及负载多奈哌齐CHP纳米粒的制备 | 第16-17页 |
2.2.2 CHP及DZP-CHP纳米粒的粒径、Zeta电位测定 | 第17页 |
2.2.3 CHP及DZP-CHP纳米粒的形貌观察 | 第17页 |
2.2.4 多奈哌齐标准曲线的制备 | 第17-18页 |
2.2.5 DZP-CHP的载药量(LC)及包封率(EE)的测定 | 第18页 |
2.2.6 体外药物释放 | 第18页 |
2.3 统计学分析 | 第18-19页 |
2.4 实验结果 | 第19-24页 |
2.4.1 CHP及DZP-CHP纳米粒的粒径、Zeta电势 | 第19-21页 |
2.4.2 CHP及DZP-CHP纳米粒子的形态观察 | 第21页 |
2.4.3 多奈哌齐标准曲线的测定 | 第21-23页 |
2.4.4 DZP-CHP纳米粒子的载药量及包封率的测定 | 第23页 |
2.4.5 DZP-CHP纳米粒子的药物释放 | 第23-24页 |
第三章 脑靶向研究 | 第24-30页 |
3.1 试剂和仪器 | 第24页 |
3.1.1 实验试剂 | 第24页 |
3.1.2 实验仪器 | 第24页 |
3.2 实验方法 | 第24-26页 |
3.2.1 ICG标记的多奈哌齐CHP纳米粒子的制备 | 第24-25页 |
3.2.2 ICG-DZP-CHP的乳化 | 第25页 |
3.2.3 活体荧光成像技术观察脑靶向 | 第25-26页 |
3.3 实验结果 | 第26-30页 |
3.3.1 ICG-DZP-CHP的乳化 | 第26-27页 |
3.3.2 活体荧光成像技术观察脑靶向 | 第27-30页 |
第四章 DZP-CHP纳米粒子对Aβ_(25-35)诱导的神经细胞损伤的保护作用 | 第30-45页 |
4.1 试剂和仪器 | 第30-31页 |
4.1.1 实验试剂及试剂盒 | 第30页 |
4.1.2 实验仪器 | 第30-31页 |
4.2 实验细胞 | 第31页 |
4.3 主要试剂配制 | 第31-32页 |
4.3.1 0.25%胰蛋白酶的配制 | 第31页 |
4.3.2 多奈哌齐的配制 | 第31-32页 |
4.3.3 MTT溶液的配制 | 第32页 |
4.3.4 细胞冻存液的配制 | 第32页 |
4.3.5 Aβ_(25-35)的孵育 | 第32页 |
4.3.6 罗丹明123染色剂的配制 | 第32页 |
4.4 实验方法 | 第32-34页 |
4.4.1 细胞培养与传代 | 第32-33页 |
4.4.2 细胞冻存 | 第33页 |
4.4.3 MTT法检测细胞存活率 | 第33页 |
4.4.4 细胞上清液中LDH活性的测定 | 第33-34页 |
4.4.5 AO/EB染色法观察细胞凋亡形态 | 第34页 |
4.4.6 罗丹明123染色法检测线粒体膜电位 | 第34页 |
4.5 统计处理与数据分析 | 第34页 |
4.6 实验结果 | 第34-45页 |
4.6.1 不同浓度Aβ_(25-35)对PC12和SH-SY5Y细胞存活率的影响 | 第34-36页 |
4.6.2 不同浓度Aβ_(25-35)对PC12和SH-SY5Y细胞上清液中LDH活力的影响 | 第36-37页 |
4.6.3 不同浓度Aβ_(25-35)对PC12和SH-SY5Y细胞损伤形态的影响 | 第37-38页 |
4.6.4 不同浓度Aβ_(25-35)对PC12和SH-SY5Y细胞线粒体膜电位的影响 | 第38-39页 |
4.6.5 DZP-CHP对Aβ_(25-35)损伤的PC12和SH-SY5Y细胞存活率的影响 | 第39-41页 |
4.6.6 DZP-CHP对Aβ_(25-35)损伤的PC12和SH-SY5Y细胞上清液LDH活力的影响 | 第41-42页 |
4.6.7 DZP-CHP对Aβ_(25-35)损伤的PC12和SH-SY5Y细胞凋亡形态的影响 | 第42-43页 |
4.6.8 DZP-CHP对Aβ_(25-35)损伤的PC12和SH-SY5Y细胞线粒体膜电位的影响 | 第43-45页 |
讨论 | 第45-47页 |
结论 | 第47-48页 |
参考文献 | 第48-54页 |
综述 | 第54-64页 |
参考文献 | 第60-64页 |
攻读硕士学位期间发表的论文 | 第64-65页 |
致谢 | 第65-66页 |