| 摘要 | 第7-10页 |
| Abstract | 第10-12页 |
| 缩略语表 | 第13-14页 |
| 1 前言 | 第14-26页 |
| 1.1 研究问题的由来 | 第14页 |
| 1.2 植物细胞质雄性不育的研究进展 | 第14-18页 |
| 1.2.1 细胞质雄性不育材料的创制 | 第15-16页 |
| 1.2.2 细胞质雄性不育的分子机制 | 第16-17页 |
| 1.2.3 十字花科蔬菜细胞质雄性不育与杂种优势利用 | 第17-18页 |
| 1.3 植物叶色突变体的研究进展 | 第18-20页 |
| 1.3.1 叶色突变体来源与分类 | 第18-19页 |
| 1.3.2 叶色突变体遗传方式 | 第19页 |
| 1.3.3 叶色突变体分子机制 | 第19-20页 |
| 1.4 叶绿体基因组研究进展 | 第20-22页 |
| 1.4.1 叶绿体基因组的结构特征 | 第20页 |
| 1.4.2 叶绿体基因组编码的基因 | 第20页 |
| 1.4.3 叶绿体基因组测序 | 第20-21页 |
| 1.4.4 叶绿体基因组片段转移 | 第21-22页 |
| 1.5 植物转录组研究进展 | 第22-24页 |
| 1.5.1 植物转录组研究内容 | 第22页 |
| 1.5.2 植物转录组测序技术 | 第22-23页 |
| 1.5.3 植物转录组的应用 | 第23页 |
| 1.5.4 差异表达基因分析 | 第23-24页 |
| 1.6 本研究的内容和目的 | 第24-25页 |
| 1.7 试验设计路线 | 第25-26页 |
| 2 材料与方法 | 第26-36页 |
| 2.1 实验材料 | 第26页 |
| 2.2 实验方法 | 第26-36页 |
| 2.2.1 TEM观察叶绿体超微结构 | 第26-27页 |
| 2.2.2 主要色素含量的测定 | 第27-29页 |
| 2.2.3 主要光合指标的测定 | 第29页 |
| 2.2.4 大白菜1409A和1409B的转录组测序分析 | 第29-30页 |
| 2.2.5 qRT-PCR验证 | 第30-31页 |
| 2.2.6 大白菜叶绿体基因组测序分析 | 第31-33页 |
| 2.2.7 RNA编辑位点的预测和鉴定 | 第33-34页 |
| 2.2.8 VIGS验证关键基因的功能 | 第34-36页 |
| 3 结果与分析 | 第36-53页 |
| 3.1 大白菜hauCMS叶片黄化表型的鉴定与遗传验证 | 第36-37页 |
| 3.2 大白菜hauCMS叶绿体超微结构观察 | 第37-38页 |
| 3.3 大白菜主要色素含量和光合指标测定 | 第38-40页 |
| 3.4 大白菜转录组测序与分析 | 第40-47页 |
| 3.4.1 转录组组装与基因注释 | 第40-42页 |
| 3.4.2 DEGs的筛选及qRT-PCR验证 | 第42-45页 |
| 3.4.3 DEGs的功能分析 | 第45-47页 |
| 3.5 叶绿体基因组测序与分析 | 第47-50页 |
| 3.5.1 叶绿体基因组组装与基因注释 | 第47-49页 |
| 3.5.2 叶绿体基因组SNP和INDEL分析 | 第49-50页 |
| 3.6 RNA编辑位点的预测和鉴定 | 第50-51页 |
| 3.7 VIGS对关键基因的验证 | 第51-53页 |
| 4 讨论 | 第53-58页 |
| 4.1 色素含量对大白菜hauCMS叶片黄化的影响 | 第53页 |
| 4.2 叶绿体发育对大白菜hauCMS叶片黄化的影响 | 第53-54页 |
| 4.3 DEGs中影响花青素和黄酮代谢的转录因子 | 第54-57页 |
| 4.4 后续研究计划 | 第57-58页 |
| 参考文献 | 第58-72页 |
| 附录1 大白菜1409A和1409B苗期叶片主要色素含量 | 第72页 |
| 附录2 大白菜1409A和1409B苗期叶片光合指标 | 第72-73页 |
| 附录3 qRT-PCR特异引物 | 第73-74页 |
| 附录4 GO富集分析 | 第74-75页 |
| 附录5 KEGG代谢通路富集分析 | 第75-76页 |
| 附录6 调节花青素和类黄酮代谢的转录因子 | 第76-77页 |
| 附录7 大白菜叶绿体基因组RNA编辑位点预测 | 第77-79页 |
| 作者简历 | 第79-80页 |
| 致谢 | 第80页 |
