| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 1 前言 | 第10-16页 |
| 1.1 研究背景 | 第10-12页 |
| 1.2 研究目的及意义 | 第12页 |
| 1.2.1 研究目的 | 第12页 |
| 1.2.2 研究意义 | 第12页 |
| 1.3 常见中英文对照缩略词表 | 第12-13页 |
| 1.4 国内外相关研究综述 | 第13-16页 |
| 2 研究对象与方法 | 第16-24页 |
| 2.1 研究对象 | 第16页 |
| 2.2 实验试剂 | 第16-17页 |
| 2.3 实验仪器 | 第17页 |
| 2.4 实验主要试剂及配制 | 第17-19页 |
| 2.5 技术路线 | 第19页 |
| 2.6 实验方法 | 第19-24页 |
| 2.6.1 鸡骨髓MSC的分离 | 第19-20页 |
| 2.6.2 鸡骨髓MSC表面标记物的检测 | 第20页 |
| 2.6.3 鸡骨髓MSC表面标记物RT-PCR的检测 | 第20-21页 |
| 2.6.4 鸡骨髓MSC生长曲线的绘制 | 第21页 |
| 2.6.5 鸡骨髓MSC克隆形成能力检测 | 第21页 |
| 2.6.6 鸡骨髓MSC核型分析 | 第21-22页 |
| 2.6.7 鸡骨髓MSC的成骨诱导分化与鉴定 | 第22页 |
| 2.6.8 鸡骨髓MSC的脂肪细胞分化与鉴定 | 第22页 |
| 2.6.9 鸡骨髓MSC成软骨分化与鉴定 | 第22页 |
| 2.6.10 鸡骨髓MSC的成神经细胞分化与鉴定 | 第22-23页 |
| 2.6.11 动物实验分组 | 第23页 |
| 2.6.12 生存率检测 | 第23页 |
| 2.6.13 形态学观察 | 第23页 |
| 2.6.14 组织学观察 | 第23页 |
| 2.6.15 血浆学检测 | 第23页 |
| 2.6.16 骨髓氧化应激指标检测 | 第23-24页 |
| 3 实验结果 | 第24-40页 |
| 3.1 鸡骨髓MSC的分离与培养 | 第24-26页 |
| 3.1.1 鸡骨髓MSC的分离 | 第24页 |
| 3.1.2 鸡骨髓MSC的培养 | 第24-26页 |
| 3.2 鸡骨髓MSC的表面标记检测 | 第26-28页 |
| 3.2.1 鸡骨髓MSC表面标记物的细胞免疫荧光检测结果 | 第26-27页 |
| 3.2.2 鸡骨髓MSC表面标记物的流式细胞仪检测结果 | 第27-28页 |
| 3.3 鸡骨髓MSC生长曲线 | 第28-29页 |
| 3.4 鸡骨髓MSC克隆形成能力 | 第29-30页 |
| 3.5 鸡骨髓MSC核型 | 第30-31页 |
| 3.6 鸡骨髓MSC诱导分化与鉴定 | 第31-36页 |
| 3.7 生率检测 | 第36-37页 |
| 3.8 组织学观察 | 第37-38页 |
| 3.9 血浆学检测 | 第38-39页 |
| 3.10 氧化应激检测 | 第39-40页 |
| 4 实验分析与讨论 | 第40-44页 |
| 5 实结论 | 第44-45页 |
| 致谢 | 第45-46页 |
| 参考文献 | 第46-52页 |
| 附录 | 第52-53页 |
| 个人简介 | 第53-54页 |
