致谢 | 第5-6页 |
中文摘要 | 第6-9页 |
英文摘要 | 第9-12页 |
缩略词表 | 第13-20页 |
第一部分 高糖诱导对人脐静脉内皮细胞自噬和凋亡的影响 | 第20-52页 |
1 前言 | 第20-23页 |
2 主要仪器与试剂 | 第23-26页 |
2.1 主要仪器 | 第23-24页 |
2.2 主要试剂 | 第24-25页 |
2.3 主要实验试剂配制 | 第25-26页 |
3 实验方法 | 第26-32页 |
3.1 人脐静脉内皮细胞培养 | 第26页 |
3.2 实验分组 | 第26-27页 |
3.3 细胞周期分析 | 第27页 |
3.4 CCK-8检测细胞增殖能力 | 第27-28页 |
3.5 流式细胞仪检测细胞凋亡 | 第28-29页 |
3.6 蛋白提取 | 第29页 |
3.7 蛋白质免疫印迹(Western Blot)实验 | 第29-32页 |
4 统计学分析 | 第32-33页 |
5 实验结果 | 第33-42页 |
5.1 高糖对脐静脉内皮细胞增殖能力的影响 | 第33页 |
5.2 高糖对脐静脉内皮细胞凋亡的影响 | 第33-36页 |
5.3 高糖对脐静脉内皮细胞自噬的影响 | 第36-38页 |
5.4 高糖对脐静脉内皮细胞表达VEGF和HGF的影响 | 第38-40页 |
5.5 高糖诱导对脐静脉内皮细胞自噬信号通路的影响 | 第40-42页 |
6 讨论 | 第42-46页 |
7 结论 | 第46-47页 |
参考文献 | 第47-52页 |
第二部分 重组人脑钠肽对高糖诱导下人脐静脉内皮细胞的保护作用 | 第52-80页 |
1 前言 | 第52-54页 |
2 主要仪器与试剂 | 第54-55页 |
2.1 主要仪器 | 第54页 |
2.2 主要试剂 | 第54页 |
2.3 主要实验试剂配制 | 第54-55页 |
3 实验方法 | 第55-58页 |
3.1 人脐静脉内皮细胞培养 | 第55页 |
3.2 实验分组 | 第55-56页 |
3.3 流式细胞仪检测细胞凋亡 | 第56页 |
3.4 CCK-8检测细胞增殖能力 | 第56页 |
3.5 划痕实验检测细胞迁移 | 第56-57页 |
3.6 蛋白免疫印迹(western blot)实验 | 第57-58页 |
4 统计学分析 | 第58-59页 |
5 实验结果 | 第59-71页 |
5.1 不同浓度rhBNP提高高糖诱导HUVECs增殖的作用 | 第59-60页 |
5.2 不同浓度rhBNP提高高糖诱导HUVECs迁移能力的作用 | 第60-62页 |
5.3 不同浓度rhBNP提高高糖诱导HUVECs表达HGF的作用 | 第62-64页 |
5.4 rhBNP减少高糖诱导HUVECs的凋亡 | 第64-65页 |
5.5 rhBNP促进高糖诱导HUVECs的自噬发生 | 第65-68页 |
5.6 rhBNP激活高糖诱导下HUVECs的ERK信号通路蛋白的影响 | 第68-71页 |
6 讨论 | 第71-74页 |
7 结论 | 第74-75页 |
参考文献 | 第75-80页 |
第三部分 rhBNP治疗糖尿病小鼠下肢缺血病变作用的研究 | 第80-114页 |
1 前言 | 第80-82页 |
2 材料与方法 | 第82-92页 |
2.1 实验动物 | 第82页 |
2.2 主要实验仪器 | 第82-83页 |
2.3 主要实验试剂及配置 | 第83-84页 |
2.4 实验方法 | 第84-92页 |
3 统计学方法 | 第92-93页 |
4 实验结果 | 第93-105页 |
4.1 实验动物统计 | 第93页 |
4.2 1型糖尿病小鼠模型及糖尿病小鼠下肢缺血模型 | 第93页 |
4.3 rhBNP对糖尿病下肢缺血小鼠血糖的影响 | 第93-94页 |
4.4 rhBNP对糖尿病小鼠下肢缺血血流恢复的影响 | 第94-97页 |
4.5 HE染色糖尿病小鼠下肢缺血的组织病理结果 | 第97页 |
4.6 rhBNP对糖尿病小鼠下肢缺血组织血管新生的影响 | 第97-100页 |
4.7 rhBNP减少糖尿病小鼠下肢缺血中内皮细胞凋亡 | 第100-101页 |
4.8 rhBNP能促进糖尿病小鼠下肢缺血组织中HGF的表达 | 第101-103页 |
4.9 rhBNP能促进糖尿病小鼠下肢缺血组织中LC3和EKR蛋白的表达 | 第103-105页 |
5 讨论 | 第105-109页 |
6 结论 | 第109-110页 |
参考文献 | 第110-114页 |
第四部分 实验总结 | 第114-115页 |
综述 | 第115-128页 |
参考文献 | 第124-128页 |
作者简历及在学期间所取得的科研成果 | 第128-129页 |