| 摘要 | 第6-9页 |
| Abstract | 第9-12页 |
| 符号说明 | 第13-14页 |
| 文献综述 | 第14-36页 |
| 第一章 秀丽隐杆线虫在药物研究中作用 | 第14-17页 |
| 1. 秀丽隐杆线虫在神经退行性疾病药物研究中的应用 | 第14-15页 |
| 2. 秀丽隐杆线虫与抗肿瘤 | 第15页 |
| 3. 秀丽隐杆线虫与抗氧化作用 | 第15-16页 |
| 4. 秀丽隐杆线虫与机体寿命 | 第16页 |
| 5. 秀丽隐杆线虫与降脂类药物 | 第16页 |
| 6. 秀丽隐杆线虫与抗菌药物 | 第16页 |
| 7. 小结 | 第16-17页 |
| 第二章 亨廷顿舞蹈症的研究进展 | 第17-21页 |
| 1. 亨廷顿舞蹈症的发病率和临床表现 | 第17-18页 |
| 2. 亨廷顿舞蹈症的发病机制 | 第18-19页 |
| 3. 亨廷顿舞蹈症的治疗方式和研究模型 | 第19-21页 |
| 3.1 降低mHtt蛋白的水平 | 第20-21页 |
| 4. 小结 | 第21页 |
| 第三章 骆驼蓬研究概述 | 第21-28页 |
| 1. 骆驼蓬的物质基础 | 第22-23页 |
| 1.1 生物碱类化合物 | 第22页 |
| 1.2 挥发油类化合物 | 第22页 |
| 1.3 脂肪油类化合物 | 第22页 |
| 1.4 黄酮及其苷类化合物 | 第22-23页 |
| 1.5 其它类化合物 | 第23页 |
| 2. 骆驼蓬药理作用研究进展 | 第23-27页 |
| 2.1 抗肿瘤作用 | 第23-24页 |
| 2.2 抗炎、镇痛、止痒作用 | 第24页 |
| 2.3 抗银屑病作用 | 第24-25页 |
| 2.4 平喘作用 | 第25页 |
| 2.5 抗病毒作用 | 第25页 |
| 2.6 抑菌、杀虫作用 | 第25-26页 |
| 2.7 对神经系统的作用 | 第26页 |
| 2.8 对心血管的作用 | 第26页 |
| 2.9 其他药理作用 | 第26-27页 |
| 3. 骆驼蓬多糖(PHPS)以及寡糖的研究进展 | 第27页 |
| 4. 小结 | 第27-28页 |
| 参考文献 | 第28-36页 |
| 前言 | 第36-38页 |
| 第一章 基于秀丽隐杆线虫模型中药筛选方法的建立 | 第38-46页 |
| 1 实验材料 | 第38页 |
| 2 实验步骤 | 第38-41页 |
| 2.1 培养基配制 | 第38-39页 |
| 2.2 中药组分提取 | 第39-40页 |
| 2.3 线虫培养 | 第40页 |
| 2.4 加药食物的配制 | 第40页 |
| 2.5 固体培养基的加药方法 | 第40页 |
| 2.6 液体培养基的加药方法 | 第40-41页 |
| 2.7 观测指标 | 第41页 |
| 2.8 同步化方法 | 第41页 |
| 3 实验结果与讨论 | 第41-45页 |
| 3.1 秀丽隐杆线虫模型在中药活性筛选中的方法学考察结果 | 第41-44页 |
| 3.2 利用AM141线虫模型的中药活性筛选结果 | 第44-45页 |
| 4 小结 | 第45-46页 |
| 第二章 基于秀丽隐杆线虫模型的体内代谢研究 | 第46-55页 |
| 1 实验材料 | 第46页 |
| 2 实验方法 | 第46-48页 |
| 2.1 色谱条件 | 第46-47页 |
| 2.2 质谱条件 | 第47页 |
| 2.3 NGM培养基的配制 | 第47页 |
| 2.4 秀丽隐杆线虫的培养与加药处理 | 第47页 |
| 2.5 对照品溶液及内标溶液的配制 | 第47-48页 |
| 3 结果与讨论 | 第48-54页 |
| 3.1 碰撞能优化 | 第48-49页 |
| 3.2 电喷雾正离子模式下去氢骆驼蓬碱质谱裂解机制总结 | 第49-50页 |
| 3.3 去氢骆驼蓬碱在线虫体内代谢物 | 第50-52页 |
| 3.4 去氢骆驼蓬碱在线虫体内代谢速率考察 | 第52-54页 |
| 4 小结 | 第54-55页 |
| 第三章 基于秀丽隐杆线虫模型的骆驼蓬多糖活性以及机制研究 | 第55-90页 |
| 第一节 基于秀丽隐杆线虫模型的骆驼蓬多糖活性评价 | 第55-74页 |
| 1 实验材料 | 第55页 |
| 2 实验方法 | 第55-61页 |
| 2.1 骆驼蓬多糖的提取 | 第55-56页 |
| 2.2 骆驼蓬多糖的纯化 | 第56页 |
| 2.3 骆驼蓬多糖的活性表征 | 第56-58页 |
| 2.4 骆驼蓬多糖中活性部位探究 | 第58-60页 |
| 2.5 荧光图片获取(焚光漂白恢复，Fluorescence Recovery After Photobleaching (FRAP)) | 第60页 |
| 2.6 数据分析 | 第60-61页 |
| 3 实验结果 | 第61-73页 |
| 3.1 骆驼蓬多糖(PHPS)抑制polyQ蛋白在线虫细胞中的聚集 | 第61-63页 |
| 3.2 表型评价 | 第63-65页 |
| 3.3 不同加药方式对线虫的影响 | 第65-67页 |
| 3.4 E.coli OP50对骆驼蓬多糖的影响 | 第67-72页 |
| 3.5 不同分子量范围的骆驼蓬多糖活性比较 | 第72-73页 |
| 4 小结 | 第73-74页 |
| 第二节 骆驼蓬多糖的单糖组成成分分析 | 第74-81页 |
| 1 实验材料 | 第74-75页 |
| 1.1 材料与试剂 | 第74页 |
| 1.2 仪器 | 第74-75页 |
| 2 实验方法 | 第75-76页 |
| 2.1 骆驼蓬多糖的提取 | 第75页 |
| 2.2 骆驼蓬多糖的纯化 | 第75页 |
| 2.3 多糖水解 | 第75页 |
| 2.4 多糖衍生化 | 第75-76页 |
| 2.5 色谱条件和质谱条件 | 第76页 |
| 3 结果与讨论 | 第76-80页 |
| 3.1 单糖衍生化产物液相色谱分离与质谱分析 | 第76-79页 |
| 3.2 骆驼蓬多糖水解单糖衍生化产物的质谱分析 | 第79-80页 |
| 4 小结 | 第80-81页 |
| 第三节 骆驼蓬多糖抑制polyQ蛋白聚集作用机制研究 | 第81-90页 |
| 1 实验材料 | 第81页 |
| 2 实验方法 | 第81-84页 |
| 2.1 骆驼蓬多糖的提取 | 第81页 |
| 2.2 骆驼蓬多糖的纯化 | 第81-82页 |
| 2.3 骆驼蓬多糖对线虫启动子的影响 | 第82页 |
| 2.4 Western blot评价 | 第82页 |
| 2.5 qRT-PCR | 第82-83页 |
| 2.6 基于蛋白质控制网络的骆驼蓬多糖作用靶点初探 | 第83-84页 |
| 3 结果与讨论 | 第84-89页 |
| 3.1 骆驼蓬多糖对线虫启动子的影响 | 第84-85页 |
| 3.2 骆驼蓬多糖可以降低polyQ蛋白的表达水平 | 第85-86页 |
| 3.3 基于蛋白质控制网络的骆驼蓬多糖作用靶点初探 | 第86-89页 |
| 4 小结 | 第89-90页 |
| 结语 | 第90-92页 |
| 参考文献 | 第92-97页 |
| 致谢 | 第97-99页 |
| 在学期间主要研究成果 | 第99-101页 |
| 个人简历 | 第101页 |
