| 中文摘要 | 第3-6页 |
| 英文摘要 | 第6-9页 |
| 英文缩略词对照表 | 第14-15页 |
| 1 绪论 | 第15-29页 |
| 1.1 研究背景与问题的提出 | 第15-17页 |
| 1.1.1 肿瘤微环境及其对细胞迁移的重要作用 | 第15页 |
| 1.1.2 微流控技术及其在癌症研究中的应用 | 第15-16页 |
| 1.1.3 问题的提出 | 第16-17页 |
| 1.2 国内外研究现状 | 第17-26页 |
| 1.2.1 肿瘤微环境中的诸多重要因素 | 第17-19页 |
| 1.2.2 微流控系统中的微环境研究模型 | 第19-26页 |
| 1.2.3 肿瘤微环境研究及其微流控模型的总结 | 第26页 |
| 1.3 研究目的、研究内容及创新性 | 第26-29页 |
| 1.3.1 研究目的及意义 | 第26-27页 |
| 1.3.2 研究内容 | 第27-28页 |
| 1.3.3 特色及创新点 | 第28-29页 |
| 2 微流控芯片的设计、制作及优化 | 第29-45页 |
| 2.1 引言 | 第29页 |
| 2.2 实验材料 | 第29-30页 |
| 2.2.1 主要仪器设备 | 第29-30页 |
| 2.2.2 主要实验材料 | 第30页 |
| 2.3 微流控芯片的设计 | 第30-33页 |
| 2.3.1 设计的基本思路 | 第30-31页 |
| 2.3.2 构型设计的主要模块 | 第31-33页 |
| 2.4 微流控芯片的制作 | 第33页 |
| 2.5 微流控芯片的优化 | 第33-43页 |
| 2.5.1 部分模块的设计与优化 | 第33-38页 |
| 2.5.2 封装方式的优化 | 第38-43页 |
| 2.6 本章小结 | 第43-45页 |
| 3 基于微流控芯片探究NGF影响卵巢癌细胞聚集体形成 | 第45-59页 |
| 3.1 引言 | 第45-46页 |
| 3.2 实验材料 | 第46-47页 |
| 3.2.1 主要仪器设备 | 第46页 |
| 3.2.2 主要实验材料 | 第46-47页 |
| 3.2.3 主要试剂配制 | 第47页 |
| 3.3 实验方法 | 第47-50页 |
| 3.3.1 细胞培养 | 第47页 |
| 3.3.2 微流控芯片的设计与制作 | 第47-48页 |
| 3.3.3 卵巢癌细胞的芯片培养 | 第48-49页 |
| 3.3.4 探究NGF及其抑制剂对 2D培养卵巢癌细胞行为的影响 | 第49-50页 |
| 3.3.5 探究NGF及其抑制剂对 3D培养卵巢癌细胞行为的影响 | 第50页 |
| 3.3.6 结果分析 | 第50页 |
| 3.4 实验结果 | 第50-55页 |
| 3.4.1 微流控芯片的特征 | 第50-51页 |
| 3.4.2 芯片中卵巢癌细胞的 2D和 3D培养 | 第51-52页 |
| 3.4.3 NGF及其抑制剂刺激下 2D培养卵巢癌细胞的行为 | 第52-54页 |
| 3.4.4 NGF及其抑制剂刺激下 3D培养卵巢癌细胞的聚集体形成 | 第54-55页 |
| 3.5 讨论和分析 | 第55-57页 |
| 3.6 本章小结 | 第57-59页 |
| 4 基于微流控芯片的肿瘤细胞三维共培养模型的构建 | 第59-75页 |
| 4.1 引言 | 第59-60页 |
| 4.2 实验材料 | 第60-61页 |
| 4.2.1 主要仪器设备 | 第60页 |
| 4.2.2 主要实验材料 | 第60-61页 |
| 4.2.3 主要试剂配制 | 第61页 |
| 4.3 实验方法 | 第61-65页 |
| 4.3.1 细胞的培养 | 第61页 |
| 4.3.2 微流控芯片的设计与制作 | 第61页 |
| 4.3.3 芯片中细胞的灌注及培养 | 第61-62页 |
| 4.3.4 三维共培养模型的搭建 | 第62-63页 |
| 4.3.5 细胞活性及形态的检测 | 第63页 |
| 4.3.6 考察不同肿瘤细胞与ECs相互诱导向三维介质中的迁移 | 第63-65页 |
| 4.3.7 结果分析 | 第65页 |
| 4.4 实验结果 | 第65-72页 |
| 4.4.1 微流控芯片的特征 | 第65-66页 |
| 4.4.2 芯片中的三维共培养模型 | 第66-67页 |
| 4.4.3 三维共培养模型下细胞的活性及形态 | 第67-69页 |
| 4.4.4 共培养条件下肿瘤细胞诱导ECs迁移 | 第69-71页 |
| 4.4.5 共培养条件下ECs影响肿瘤细胞迁移 | 第71-72页 |
| 4.5 讨论与分析 | 第72-73页 |
| 4.6 本章小结 | 第73-75页 |
| 5 基于三维共培养模型考察肝癌干细胞样细胞诱导血管内皮细胞迁移 | 第75-103页 |
| 5.1 引言 | 第75-76页 |
| 5.2 实验材料 | 第76-78页 |
| 5.2.1 主要仪器设备 | 第76-77页 |
| 5.2.2 主要实验材料 | 第77页 |
| 5.2.3 主要试剂配制 | 第77-78页 |
| 5.3 实验方法 | 第78-84页 |
| 5.3.1 细胞的培养 | 第78-79页 |
| 5.3.2 Western blot检测MC，SC中迁移相关蛋白的表达 | 第79-80页 |
| 5.3.3 ELISA分析MC，SC中迁移相关蛋白的表达 | 第80页 |
| 5.3.4 Transwell法考察MC，SC诱导EC迁移 | 第80-81页 |
| 5.3.5 微流控芯片的设计与制作 | 第81页 |
| 5.3.6 跨通道可溶性因子浓度梯度形成及表征 | 第81-82页 |
| 5.3.7 肿瘤细胞的灌注及三维培养 | 第82页 |
| 5.3.8 肿瘤细胞活性及形态的检测 | 第82页 |
| 5.3.9 三维共培养模型的搭建 | 第82-83页 |
| 5.3.10 考察MC，SC诱导的EC迁移行为 | 第83页 |
| 5.3.11 考察ECs影响下MC，SC的行为 | 第83-84页 |
| 5.3.12 实验结果分析 | 第84页 |
| 5.4 实验结果 | 第84-99页 |
| 5.4.1 迁移相关蛋白在MC，SC中的表达 | 第84-85页 |
| 5.4.2 MC，SC培养液中迁移相关蛋白的含量 | 第85页 |
| 5.4.3 MC，SC在诱导EC迁移时存在差异 | 第85-86页 |
| 5.4.4 微流控芯片的特征 | 第86-88页 |
| 5.4.5 跨通道可溶性因子浓度梯度的形成 | 第88-90页 |
| 5.4.6 芯片中的肿瘤细胞三维共培养模型 | 第90-92页 |
| 5.4.7 三维模型中细胞的活性及形态 | 第92-93页 |
| 5.4.8 MCs，SCs诱导的ECs迁移及血管生成早期行为 | 第93-95页 |
| 5.4.9 ECs影响MCs，SCs迁移及行为 | 第95-99页 |
| 5.5 讨论与分析 | 第99-101页 |
| 5.6 本章小结 | 第101-103页 |
| 6 总结和展望 | 第103-107页 |
| 6.1 论文工作总结及主要结论 | 第103-105页 |
| 6.2 后续研究工作展望 | 第105-107页 |
| 致谢 | 第107-109页 |
| 参考文献 | 第109-129页 |
| 附录 | 第129页 |
| A. 作者在攻读博士期间发表的论文 | 第129页 |
| B. 作者在攻读博士期间参加科研项目情况 | 第129页 |
| C. 作者在攻读博士期间取得的科研成果： | 第129页 |
