摘要 | 第5-7页 |
abstract | 第7-8页 |
第一章 文献综述 | 第11-21页 |
1.1 核桃举肢蛾研究概述 | 第11-13页 |
1.1.1 核桃举肢蛾形态特征 | 第11页 |
1.1.2 核桃举肢蛾分布及危害 | 第11页 |
1.1.3 核桃举肢蛾生活史及习性 | 第11-12页 |
1.1.4 核桃举肢蛾防治 | 第12-13页 |
1.2 内参基因在实时定量PCR应用 | 第13-16页 |
1.2.1 荧光定量PCR简介 | 第13-14页 |
1.2.2 荧光定量PCR定量方法 | 第14-15页 |
1.2.3 内参基因在荧光定量PCR作用 | 第15-16页 |
1.3 昆虫神经肽研究 | 第16-19页 |
1.3.1 昆虫神经系统 | 第16页 |
1.3.2 昆虫神经肽命名 | 第16-17页 |
1.3.3 昆虫神经肽生物合成、加工和释放 | 第17页 |
1.3.4 神经肽种类 | 第17-18页 |
1.3.5 昆虫神经肽前体物基因研究进展 | 第18-19页 |
1.4 研究目的及意义 | 第19-20页 |
1.5 研究技术路线 | 第20-21页 |
第二章 核桃举肢蛾内参基因筛选 | 第21-32页 |
2.1 材料及方法 | 第21页 |
2.1.1 供试虫源 | 第21页 |
2.1.2 试验材料及处理 | 第21页 |
2.1.3 仪器及试剂 | 第21页 |
2.2 研究方法 | 第21-24页 |
2.2.1 总RNA提取 | 第21-22页 |
2.2.2 第一链cDNA合成 | 第22页 |
2.2.3 内参基因筛选 | 第22-24页 |
2.2.4 内参基因在虫体不同发育阶段、不同组织中的表达 | 第24页 |
2.2.5 数据整理及分析 | 第24页 |
2.3 结果及分析 | 第24-29页 |
2.3.1 总RNA完整性检测 | 第24页 |
2.3.2 候选基因的普通PCR检测 | 第24-25页 |
2.3.3 引物扩增效率及特异性检验 | 第25-26页 |
2.3.4 内参基因表达稳定性分析 | 第26-29页 |
2.4 结论和讨论 | 第29-32页 |
第三章 核桃举肢蛾神经肽及受体基因在成虫不同组织的表达 | 第32-47页 |
3.1 核桃举肢蛾神经肽及受体基因的鉴定及分析 | 第32页 |
3.1.1 核桃举肢蛾神经肽及受体基因鉴定 | 第32页 |
3.1.2 结构域及序列分析 | 第32页 |
3.2 核桃举肢蛾神经肽及受体基因在成虫不同组织的表达 | 第32-33页 |
3.2.1 试验材料 | 第32页 |
3.2.2 核桃举肢蛾雌雄成虫头、胸、腹各组织总RNA提取 | 第32-33页 |
3.2.3 第一链cDNA合成 | 第33页 |
3.2.4 用于RT-qPCR引物的设计及特异性检验 | 第33页 |
3.2.5 内参基因选择和RT-qPCR程序设定 | 第33页 |
3.3 数据处理及分析 | 第33-37页 |
3.4 结果及分析 | 第37-45页 |
3.4.1 核桃举肢蛾神经肽及受体基因的序列鉴定及分析 | 第37-38页 |
3.4.2 核桃举肢蛾神经肽受体基因系统进化分析 | 第38-39页 |
3.4.3 核桃举肢蛾神经肽及受体引物序列及特异性检验 | 第39-40页 |
3.4.4 神经肽和其受体在核桃举肢蛾成虫不同部位的相对表达 | 第40-45页 |
3.5 结论和讨论 | 第45-47页 |
第四章 小结与展望 | 第47-49页 |
4.1 主要结果 | 第47-48页 |
4.2 展望 | 第48-49页 |
参考文献 | 第49-52页 |
附录 | 第52-60页 |
致谢 | 第60-61页 |
作者简介 | 第61页 |