| 中文摘要 | 第6-8页 |
| 英文摘要 | 第8-9页 |
| 常用缩写词中英文对照表 | 第10-11页 |
| 前言 | 第11-13页 |
| 1 材料与方法 | 第13-21页 |
| 1.1 实验材料 | 第13-15页 |
| 1.1.1 所用仪器 | 第13-14页 |
| 1.1.2 试剂及耗材 | 第14页 |
| 1.1.3 动物与分组 | 第14-15页 |
| 1.2 实验方法 | 第15-20页 |
| 1.2.1 PTOA大鼠模型 | 第15页 |
| 1.2.2 样本获取与保存 | 第15-16页 |
| 1.2.3 X线 | 第16页 |
| 1.2.4 IndianInk染色方法及评分标准 | 第16页 |
| 1.2.5 组织块的包埋与切片 | 第16-17页 |
| 1.2.6 番红O染色 | 第17-18页 |
| 1.2.7 Real-timePCR | 第18-20页 |
| 1.2.8 免疫组化 | 第20页 |
| 1.2.9 酶联免疫吸附试验ELISA | 第20页 |
| 1.3 统计学处理 | 第20-21页 |
| 2 结果 | 第21-28页 |
| 2.1 抽屉试验、X线证实PTOA造模成功 | 第21页 |
| 2.2 关节软骨的IndianInk染色 | 第21-23页 |
| 2.3 关节软骨的番红O染色 | 第23页 |
| 2.4 关节软骨中MMP-13和COLⅩ的mRNA相对表达量的变化 | 第23-24页 |
| 2.5 关节软骨内Ihh及下游基因的mRNA相对表达量的变化 | 第24-26页 |
| 2.6 关节软骨内Ihh蛋白表达量的变化 | 第26-27页 |
| 2.7 血清中的Ihh浓度的变化 | 第27-28页 |
| 3 讨论 | 第28-30页 |
| 3.1 PTOA模型 | 第28页 |
| 3.2 Ihh在大鼠OA早期有升高阶段 | 第28页 |
| 3.3 血清中Ihh变化量 | 第28-29页 |
| 3.4 炎性因子 | 第29-30页 |
| 4 结论 | 第30-31页 |
| 参考文献 | 第31-33页 |
| 综述 | 第33-46页 |
| 参考文献 | 第40-46页 |
| 致谢 | 第46-47页 |
| 个人简历 | 第47页 |