| 摘要 | 第8-10页 |
| Abstract | 第10-11页 |
| 第一章 文献综述 | 第12-20页 |
| 1.1 棉花研究进展 | 第12-13页 |
| 1.1.1 棉属概况 | 第12页 |
| 1.1.2 基因工程手段对棉花产量及品质改良研究 | 第12-13页 |
| 1.2 花色素合成研究进展 | 第13-17页 |
| 1.2.1 花色素的结构 | 第14页 |
| 1.2.2 花色素合成途径 | 第14-15页 |
| 1.2.3 花色素合成的影响因素 | 第15页 |
| 1.2.4 花色素合成途径的分子调控 | 第15-17页 |
| 1.3 植物启动子的研究进展 | 第17-20页 |
| 1.3.1 植物启动子的结构及类型 | 第17-18页 |
| 1.3.2 植物启动子分离及鉴定的研究方法 | 第18-19页 |
| 1.3.3 启动子区的生物信息学分析 | 第19-20页 |
| 第二章 引言 | 第20-22页 |
| 2.1 立论依据及研究目的 | 第20-21页 |
| 2.2 技术路线 | 第21-22页 |
| 第三章 材料与方法 | 第22-30页 |
| 3.1 材料 | 第22-25页 |
| 3.1.1 植物材料 | 第22页 |
| 3.1.2 宿主菌株与载体质粒 | 第22页 |
| 3.1.3 主要仪器设备 | 第22页 |
| 3.1.4 主要化学试剂 | 第22-23页 |
| 3.1.5 主要溶液及配方 | 第23页 |
| 3.1.6 主要培养基及配方 | 第23-24页 |
| 3.1.7 本试验中所使用的PCR引物 | 第24-25页 |
| 3.2 方法 | 第25-30页 |
| 3.2.1 棉花的遗传转化 | 第25页 |
| 3.2.2 转基因植株的GUS组织化学染色 | 第25-26页 |
| 3.2.3 花色素的提取及测定方法 | 第26页 |
| 3.2.4 大肠杆菌的转化 | 第26页 |
| 3.2.5 农杆菌感受态细胞LBA4404的制备及转化 | 第26-27页 |
| 3.2.6 RNA提取及cDNA合成方法 | 第27页 |
| 3.2.7 基因组DNA提取方法 | 第27页 |
| 3.2.8 基因的定量RT-PCR分析 | 第27-28页 |
| 3.2.9 pBI121-pGhPAP1::GUS载体的构建 | 第28-30页 |
| 第四章 结果与分析 | 第30-42页 |
| 4.1 棉花红色植株与花色素合成的关系 | 第30-32页 |
| 4.1.1 棉花红色植株表型分析 | 第30-31页 |
| 4.1.2 棉花红色植株的花色素含量 | 第31页 |
| 4.1.3 花色素合成途径结构基因表达量 | 第31-32页 |
| 4.2 天然红色植株的GhPAP1基因 | 第32-33页 |
| 4.3 GhPAP1基因的转基因功能研究 | 第33-36页 |
| 4.3.1 GhPAP1超量表达植株的获得 | 第33-34页 |
| 4.3.2 35S::GhPAP1植株多个部位颜色发生改变 | 第34-35页 |
| 4.3.3 GhPAP1促进棉花各组织花色素含量的提高 | 第35-36页 |
| 4.4 GhPAP1超量表达调控花色素的合成途径 | 第36-37页 |
| 4.4.1 叶片中花色素合成途径的调控 | 第36页 |
| 4.4.2 纤维中花色素合成途径的调控 | 第36-37页 |
| 4.5 超量表达GhPAP1会影响棉花纤维发育 | 第37-39页 |
| 4.6 GhPAP1基因的表达特性分析 | 第39-42页 |
| 4.6.1 pBI121-pGhPAP1::GUS植物载体酶切验证 | 第39页 |
| 4.6.2 pGhPAP1::GUS转基因植株的获得 | 第39-40页 |
| 4.6.3 pGhPAP1::GUS转基因植株的组织特异性分析 | 第40-42页 |
| 第五章 讨论 | 第42-44页 |
| 5.1 棉花的纤维色泽不受GhPAP1超量表达的影响 | 第42页 |
| 5.2 棉花纤维发育受到GhPAP1超量表达的影响 | 第42页 |
| 5.3 棉花GhPAP1基因可用于作为筛选标记 | 第42-44页 |
| 第六章 结论 | 第44-46页 |
| 6.1 主要结论 | 第44页 |
| 6.2 创新点 | 第44-46页 |
| 参考文献 | 第46-50页 |
| 附录 | 第50-52页 |
| 附录Ⅰ 缩略词英汉对照表 | 第50页 |
| 附录Ⅱ GhPAP1和GhRLC1编码的蛋白序列比对 | 第50-51页 |
| 附录Ⅲ 攻读硕士学位期间发表论文的情况 | 第51-52页 |
| 致谢 | 第52页 |
