| 中英文缩略词表 | 第9-10页 |
| 摘要 | 第10-13页 |
| Abstract | 第13-15页 |
| 第一部分 理论研究 | 第16-32页 |
| 第一章 脑损伤早期癫痫的发病机制研究进展 | 第16-24页 |
| 1 创伤后癫痫的发病机制 | 第16-20页 |
| 1.1 神经递质 | 第16-17页 |
| 1.1.1 谷氨酸 | 第16页 |
| 1.1.2 γ-氨基丁酸 | 第16-17页 |
| 1.2 离子通道 | 第17-18页 |
| 1.3 胶质细胞 | 第18页 |
| 1.3.1 星形胶质细胞 | 第18页 |
| 1.3.2 小胶质细胞 | 第18页 |
| 1.4 自由基 | 第18-19页 |
| 1.5 炎症因子 | 第19-20页 |
| 1.5.1 白介素-1(IL-1β) | 第19页 |
| 1.5.2 肿瘤坏死因子(TNF-α) | 第19页 |
| 1.5.3 转化生长因子(TGF-β) | 第19-20页 |
| 2 小结 | 第20-21页 |
| 参考文献 | 第21-24页 |
| 第二章 抗癫痫中药的研究进展 | 第24-32页 |
| 1 中药抗癫痫复方 | 第24-25页 |
| 1.1 定痫丸 | 第24-25页 |
| 1.2 补脑止痫散 | 第25页 |
| 1.3 柴胡疏肝汤 | 第25页 |
| 2 抗癫痫的中药单方 | 第25-26页 |
| 2.1 大黄 | 第25-26页 |
| 2.2 黄岑 | 第26页 |
| 2.3 青礞石 | 第26页 |
| 3 中药有效成分抗癫痫 | 第26-28页 |
| 3.1 皂苷类 | 第26-27页 |
| 3.2 黄酮类 | 第27页 |
| 3.3 酚类 | 第27页 |
| 3.4 挥发油类 | 第27-28页 |
| 3.5 生物碱类 | 第28页 |
| 4 结语 | 第28-29页 |
| 参考文献 | 第29-32页 |
| 第二部分 实验研究 | 第32-60页 |
| 第三章 HPLC法检测大黄-黄等药对中4种成分的含量 | 第32-38页 |
| 1 实验材料 | 第32页 |
| 1.1 主要药品与试剂 | 第32页 |
| 1.2 主要实验仪器与设备 | 第32页 |
| 2 方法与结果 | 第32-36页 |
| 2.1 大黄-黄芩对照品的标定 | 第32-33页 |
| 2.1.1 色谱条件 | 第32-33页 |
| 2.1.2 混合对照品溶液的制备 | 第33页 |
| 2.1.3 供试品溶液制备 | 第33页 |
| 2.1.4 阴性样品溶液的制备 | 第33页 |
| 2.2 方法学考察 | 第33-35页 |
| 2.2.1 标准曲线及线性范围 | 第33-34页 |
| 2.2.2 精密度 | 第34页 |
| 2.2.3 检测限 | 第34页 |
| 2.2.4 稳定性考察 | 第34页 |
| 2.2.5 重复性试验 | 第34页 |
| 2.2.6 加样回收率 | 第34-35页 |
| 2.3 样品含量测定 | 第35-36页 |
| 3 讨论 | 第36页 |
| 3.1 药对配伍的来源 | 第36页 |
| 3.2 提取条件的选择 | 第36页 |
| 3.3 色谱条件的优化 | 第36页 |
| 4 结论 | 第36-37页 |
| 参考文献 | 第37-38页 |
| 第四章 大黄-黄等配伍应用对脑损伤早期癫痫小鼠行为学及脑电图的影响 | 第38-44页 |
| 1 实验材料 | 第38页 |
| 1.1 实验动物 | 第38页 |
| 1.2 主要药品与试剂 | 第38页 |
| 1.3 主要实验仪器与设备 | 第38页 |
| 1.4 主要溶液及试剂的配制 | 第38页 |
| 2 实验方法 | 第38-40页 |
| 2.1 脑损伤模型的建立 | 第38-39页 |
| 2.2 动物分组及给药 | 第39页 |
| 2.3 癫痫行为指标观察 | 第39页 |
| 2.4 脑电图(EEG)分析 | 第39-40页 |
| 2.5 统计学分析 | 第40页 |
| 3 结果 | 第40-42页 |
| 3.1 行为学观察 | 第40页 |
| 3.2 脑电图记录 | 第40-42页 |
| 4 讨论 | 第42-43页 |
| 参考文献 | 第43-44页 |
| 第五章 大黄-黄芩配伍应用对脑损伤早期癫痫小鼠星形胶质细胞的影响 | 第44-53页 |
| 1 实验材料 | 第44-46页 |
| 1.1 实验动物 | 第44页 |
| 1.2 主要药品与试剂 | 第44-45页 |
| 1.3 主要实验仪器与设备 | 第45页 |
| 1.4 主要试剂的配制 | 第45-46页 |
| 2 实验方法 | 第46-48页 |
| 2.1 免疫荧光 | 第46-47页 |
| 2.1.1 小鼠脑组织灌注及固定 | 第46-47页 |
| 2.1.2 荧光染色检测海马DG区GFAP的表达 | 第47页 |
| 2.2 免疫蛋白印迹(Western blot) | 第47-48页 |
| 2.2.1 组织蛋白提取及含量测定 | 第47页 |
| 2.2.2 免疫蛋白印迹检测海马区GFAP的表达水平 | 第47-48页 |
| 3 结果 | 第48-51页 |
| 3.1 海马DG区GFAP的表达 | 第48-50页 |
| 3.2 海马区GFAP的蛋白表达 | 第50-51页 |
| 4 讨论 | 第51-52页 |
| 参考文献 | 第52-53页 |
| 第六章 大黄-黄芩配伍应用对脑损伤早期癫痫炎症介质及凋亡相关因子的影响 | 第53-60页 |
| 1 实验材料 | 第53页 |
| 1.1 实验动物 | 第53页 |
| 1.2 主要药品与试剂 | 第53页 |
| 1.3 主要实验仪器与设备 | 第53页 |
| 2 实验方法 | 第53-55页 |
| 2.1 Real-Time PCR检测IL-1βmRNA、TNF-α mRNA表达水平 | 第53-55页 |
| 2.1.1 海马组织样品总RNA的提取 | 第54页 |
| 2.1.2 逆转录反应 | 第54页 |
| 2.1.3 引物设计 | 第54页 |
| 2.1.4 PCR条件 | 第54-55页 |
| 2.1.5 计算结果 | 第55页 |
| 2.2 免疫蛋白印迹检测海马区炎性因子、凋亡蛋白及特异蛋白(NKCC1)的表达 | 第55页 |
| 2.3 统计学处理 | 第55页 |
| 3 结果 | 第55-58页 |
| 3.1 PCR结果 | 第55-56页 |
| 3.2 Western Blot结果 | 第56-58页 |
| 3.2.1 炎性因子(IL-1β、TNF-α) | 第56页 |
| 3.2.2 凋亡蛋白(caspase-3、Bax、 Bcl-2) | 第56-57页 |
| 3.2.3 特异性蛋白(NKCC1) | 第57-58页 |
| 4 讨论 | 第58-59页 |
| 参考文献 | 第59-60页 |
| 全文结论 | 第60-61页 |
| 攻读硕士学位期间所取得的学术成果 | 第61-62页 |
| 致谢 | 第62-63页 |
