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小菜蛾颗粒体病毒瞬时表达实验系统的构建及其晚期表达因子在非受纳细胞系Sf-9中的功能分析

中文摘要第4-5页
Abstract第5页
一. 前言第9-22页
    1.1 杆状病毒晚期表达因子第9-19页
        1.1.1 杆状病毒第9-13页
        1.1.2 杆状病毒基因表达调控第13-15页
        1.1.3 杆状病毒晚期表达因子第15-19页
    1.2 小菜蛾颗粒体病毒第19-21页
    1.3 研究目的和意义第21-22页
二. 实验材料和工具第22-28页
    2.1 试剂与试剂盒第22-23页
        2.1.1 试剂第22-23页
        2.1.2 试剂盒第23页
    2.2 酶及分子量标准第23页
    2.3 菌株和细菌培养基第23页
        2.3.1 大肠杆菌菌株第23页
        2.3.2 细菌培养基第23页
    2.4 细胞系和细胞培养基第23-24页
        2.4.1 昆虫细胞系第23-24页
        2.4.2 细胞培养基第24页
    2.5 质粒和引物第24-26页
        2.5.1 克隆载体第24-26页
        2.5.2 AcMNPV瞬时表达实验系统第26页
        2.5.3 测序引物第26页
    2.6 病毒株第26-27页
    2.7 主要仪器设备第27-28页
三. 实验方法和步骤第28-40页
    3.1 PlxyGV cosmid文库的构建第28-33页
        3.1.1 小菜蛾的饲养第28页
        3.1.2 病毒的扩增和纯化第28-29页
        3.1.3 病毒DNA的提取第29页
        3.1.4 文库的构建第29-31页
        3.1.5 文库的筛选第31-33页
    3.2 PlxyGV晚期表达因子瞬时表达质粒文库的构建第33-35页
        3.2.1 目的基因PCR引物设计第33页
        3.2.2 目的基因的扩增和载体的制备第33-34页
        3.2.3 目的基因和载体的体外双酶切第34页
        3.2.4 体外连接反应第34页
        3.2.5 连接产物转化大肠杆菌第34-35页
        3.2.6 重组质粒的筛选和鉴定第35页
    3.3 PlxyGV晚期表达报告质粒的构建第35-36页
        3.3.1 PlxyGV晚期报告质粒的构建第35-36页
        3.3.2 PlxyGV极晚期报告质粒的构建第36页
    3.4 瞬时表达实验第36-38页
        3.4.1 细胞培养第36-37页
        3.4.2 转染第37页
        3.4.3 荧光素酶(luciferase,LUC)活性检测第37页
        3.4.4 β-葡萄糖醛酸酶(β-Glucuronidase,GUS)活性检测第37-38页
    3.5 计算机辅助分析第38-40页
        3.5.1 序列比对第38页
        3.5.2 比对数据浏览第38页
        3.5.3 构建进化树第38-39页
        3.5.4 进化树可信度评估第39-40页
四. 实验结果第40-74页
    4.1 PlxyGV cosmid文库的构建第40-47页
        4.1.1 PlxyGV DNA的提取第40-41页
        4.1.2 文库构建与筛选第41-42页
        4.1.3 PlxyGV基因组DNA cosmid文库的鉴定分析第42-47页
    4.2 PlxyGV晚期表达因子瞬时表达质粒文库和报告质粒第47-52页
    4.3 PlxyGV晚期报告基因在不同细胞系中的瞬时表达实验结果第52-53页
    4.4 PlxyGV瞬时表达实验系统不支持AcMNPV晚期报告质粒表达第53页
    4.5 PlxyGV LEF-2能部分替代AcMNPV LEF-2的功能第53-62页
    4.6 PlxyGV部分晚期表达因子与其它杆状病毒同源蛋白的进化关系第62-74页
五. 讨论第74-81页
    5.1 PlxyGV受纳细胞系的筛选第74-75页
    5.2 PlxyGV晚期表达因子在Sf-9中的功能分析第75-76页
    5.3 进化树构建方法的分析第76-78页
    5.4 PlxyGV晚期表达因子蛋白的进化特点第78-81页
参考文献第81-89页
文章中的缩略词第89-90页
在校期间撰写的论文第90-91页
致谢第91页

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