| 摘要 | 第3-6页 |
| ABSTRACT | 第6-8页 |
| 第1章 引言 | 第17-27页 |
| 1.1 番茄 | 第17页 |
| 1.2 番茄中主要的植物化学物 | 第17-20页 |
| 1.2.1 番茄中的类胡萝卜素 | 第17-19页 |
| 1.2.2 番茄中的酚类化合物 | 第19-20页 |
| 1.3 番茄及其提取物的生物活性 | 第20-24页 |
| 1.3.1 番茄及其提取物的体外活性(in vitro) | 第21-23页 |
| 1.3.2 番茄及其提取物的体内活性(in vivo) | 第23-24页 |
| 1.4 本课题研究的目的、意义及主要内容 | 第24-27页 |
| 1.4.1 课题来源 | 第24页 |
| 1.4.2 研究价值和意义 | 第24-25页 |
| 1.4.3 主要研究内容 | 第25-27页 |
| 第2章 不同品种番茄中类胡萝卜素的研究 | 第27-49页 |
| 2.1 引言 | 第27-28页 |
| 2.2 试验材与设备 | 第28-30页 |
| 2.2.1 原料 | 第28-29页 |
| 2.2.2 试剂 | 第29-30页 |
| 2.2.3 标准品 | 第30页 |
| 2.2.4 实验仪器 | 第30页 |
| 2.3 试验方法 | 第30-32页 |
| 2.3.1 原料预处理 | 第30-31页 |
| 2.3.2 类胡萝卜素的提取 | 第31页 |
| 2.3.3 类胡萝卜素标准品的异构化 | 第31页 |
| 2.3.4 类胡萝卜素组成的UPLC测定 | 第31-32页 |
| 2.3.5 类胡萝卜素的结构鉴定及组成 | 第32页 |
| 2.3.6 UPLC的方法学考察 | 第32页 |
| 2.4 数据分析及计算 | 第32-33页 |
| 2.5 结果 | 第33-45页 |
| 2.5.1 类胡萝卜素的分离提取 | 第33页 |
| 2.5.2 类胡萝卜素的UPLC鉴定分析 | 第33-41页 |
| 2.5.3 UPLC方法学考察 | 第41-42页 |
| 2.5.4 不同品种番茄类胡萝卜素含量 | 第42-45页 |
| 2.6 讨论 | 第45-47页 |
| 2.6.1 建立快速、有效的UPLC液相分离方法 | 第45-46页 |
| 2.6.2 Q-ratio是鉴定不同结构类胡萝卜素的一种好方法 | 第46-47页 |
| 2.6.3 基因是影响不同番茄中类胡萝卜素含量的主要因素 | 第47页 |
| 2.7 小结 | 第47-49页 |
| 第3章 不同品种番茄中酚类化合物的研究 | 第49-73页 |
| 3.1 引言 | 第49-50页 |
| 3.2 试验材料与设备 | 第50-51页 |
| 3.2.1 原料 | 第50页 |
| 3.2.2 试剂 | 第50页 |
| 3.2.3 标准品 | 第50页 |
| 3.2.4 实验仪器 | 第50-51页 |
| 3.3 试验方法 | 第51-55页 |
| 3.3.1 原料预处理 | 第51页 |
| 3.3.2 酚类化合物的提取 | 第51-52页 |
| 3.3.3 微波辅助提取优化设计 | 第52-53页 |
| 3.3.4 抗氧化能力 | 第53页 |
| 3.3.5 总酚含量测定 | 第53-54页 |
| 3.3.6 HPLC测定酚类化合物 | 第54页 |
| 3.3.7 HPLC的方法学考察 | 第54-55页 |
| 3.4 数据分析及计算 | 第55页 |
| 3.5 结果 | 第55-69页 |
| 3.5.1 微波辅助提取 | 第55页 |
| 3.5.2 以FRAP为提取目标的微波辅助提取工艺的优化 | 第55-59页 |
| 3.5.3 以ORAC为提取目标的微波辅助提取工艺的优化 | 第59-62页 |
| 3.5.4 优化提取工艺验证 | 第62页 |
| 3.5.5 酚类化合物的HPLC鉴定分析 | 第62页 |
| 3.5.6 HPLC方法验证 | 第62-65页 |
| 3.5.7 不同品种番茄酚类化合物组成及含量 | 第65-69页 |
| 3.5.8 微波辅助与传统提取对比 | 第69页 |
| 3.6 讨论 | 第69-71页 |
| 3.6.1 基因是影响番茄中酚类化合物组成和含量的主要因素 | 第69-70页 |
| 3.6.2 以不同抗氧化能力测定方法指标为目标,得到的MAE优化工艺提取参数相近 | 第70-71页 |
| 3.6.3 微波辅助提取酚类化合物具有明显的优势 | 第71页 |
| 3.7 小结 | 第71-73页 |
| 第4章 紫色番茄中花青素的研究 | 第73-91页 |
| 4.1 引言 | 第73-74页 |
| 4.2 试验材料与设备 | 第74-75页 |
| 4.2.1 原料 | 第74页 |
| 4.2.2 试剂 | 第74页 |
| 4.2.3 标准品 | 第74-75页 |
| 4.2.4 实验仪器 | 第75页 |
| 4.3 试验方法 | 第75-78页 |
| 4.3.1 原料预处理 | 第75页 |
| 4.3.2 颜色测定 | 第75-76页 |
| 4.3.3 样品提取 | 第76-77页 |
| 4.3.4 植物化学物组成及含量测定 | 第77页 |
| 4.3.5 LC-MS鉴定 | 第77-78页 |
| 4.3.6 总酚含量测定 | 第78页 |
| 4.4 数据分析及计算 | 第78页 |
| 4.5 结果 | 第78-88页 |
| 4.5.1 颜色测定 | 第78页 |
| 4.5.2 植物化学物组成 | 第78-82页 |
| 4.5.3 UPLC方法验证 | 第82-83页 |
| 4.5.4 花青素纯化 | 第83-85页 |
| 4.5.5 花青素鉴定 | 第85-86页 |
| 4.5.6 植物化学物含量测定 | 第86-88页 |
| 4.6 讨论 | 第88-90页 |
| 4.6.1 UPLC是一种快速、有效的分离方法 | 第88页 |
| 4.6.2 传统育种方法使新的花青素在紫色番茄中首次表达 | 第88-89页 |
| 4.6.3 紫色番茄中植物化学物的组成和含量 | 第89-90页 |
| 4.7 小结 | 第90-91页 |
| 第5章 不同品种番茄的体外抗氧化活性研究 | 第91-103页 |
| 5.1 引言 | 第91-92页 |
| 5.2 试验材料与设备 | 第92-93页 |
| 5.2.1 原料 | 第92页 |
| 5.2.2 试剂 | 第92页 |
| 5.2.3 标准品 | 第92页 |
| 5.2.4 实验仪器 | 第92-93页 |
| 5.3 试验方法 | 第93-95页 |
| 5.3.1 原料预处理 | 第93页 |
| 5.3.2 样品提取 | 第93页 |
| 5.3.3 脂溶性提取物抗氧化活性测定 | 第93-95页 |
| 5.3.4 水溶性提取物抗氧化活性测定 | 第95页 |
| 5.4 数据分析及计算 | 第95页 |
| 5.5 结果 | 第95-98页 |
| 5.5.1 脂溶性提取物抗氧化活性 | 第95页 |
| 5.5.2 水溶性提取物抗氧化活性 | 第95-98页 |
| 5.5.3 抗氧化活性与植物化学物含量之间的关系 | 第98页 |
| 5.6 讨论 | 第98-102页 |
| 5.6.1 96孔板微型测定法是一种快速、准确的体外抗氧化活性测定方法 | 第98-99页 |
| 5.6.2 不同体外氧化活性测定方法的差异 | 第99-100页 |
| 5.6.3 番茄抗氧化活性与植物化学物含量之间的关系 | 第100-101页 |
| 5.6.4 番茄中植物化学物的抗氧化机理 | 第101-102页 |
| 5.7 小结 | 第102-103页 |
| 第6章 不同品种番茄对细胞抗氧化活性的影响 | 第103-125页 |
| 6.1 引言 | 第103-104页 |
| 6.2 试验材料与设备 | 第104-106页 |
| 6.2.1 原料 | 第104页 |
| 6.2.2 试剂 | 第104-105页 |
| 6.2.3 标准品 | 第105页 |
| 6.2.4 细胞系 | 第105页 |
| 6.2.5 实验仪器 | 第105-106页 |
| 6.3 试验方法 | 第106-108页 |
| 6.3.1 原料预处理 | 第106页 |
| 6.3.2 颜色测定 | 第106页 |
| 6.3.3 样品提取 | 第106页 |
| 6.3.4 总类胡萝卜素含量 | 第106页 |
| 6.3.5 类胡萝卜素组成的UPLC测定 | 第106页 |
| 6.3.6 化学方法测定体外抗氧化活性(PCL、DPPH、ORAC) | 第106页 |
| 6.3.7 细胞模型测定体外抗氧化活性 | 第106-108页 |
| 6.4 数据处理 | 第108-109页 |
| 6.5 结果 | 第109-122页 |
| 6.5.1 颜色测定 | 第109页 |
| 6.5.2 植物化学物组成 | 第109-113页 |
| 6.5.3 番茄脂溶性提取物的体外抗氧化活性 | 第113-115页 |
| 6.5.4 番茄脂溶性提取液对H9c2细胞的毒性作用 | 第115-117页 |
| 6.5.5 番茄脂溶性提取液对H_2O_2诱导的H9c2心肌细胞损伤的保护作用 | 第117-122页 |
| 6.6 讨论 | 第122-124页 |
| 6.6.1 H_2O_2诱导的H9c2心肌细胞损伤模型的建立 | 第122-123页 |
| 6.6.2 番茄脂溶性提取液中植物化学物的协同增效作用 | 第123页 |
| 6.6.3 番茄脂溶性提取液对H_2O_2诱导的H9c2心肌细胞损伤的保护机理 | 第123-124页 |
| 6.7 小结 | 第124-125页 |
| 第7章 紫色番茄对乳腺癌细胞生长的抑制作用 | 第125-139页 |
| 7.1 引言 | 第125-126页 |
| 7.2 试验材料与设备 | 第126-127页 |
| 7.2.1 原料 | 第126页 |
| 7.2.2 试剂 | 第126页 |
| 7.2.3 标准品 | 第126-127页 |
| 7.2.4 细胞系 | 第127页 |
| 7.2.5 实验仪器 | 第127页 |
| 7.3 试验方法 | 第127-130页 |
| 7.3.1 原料预处理 | 第127页 |
| 7.3.2 样品提取 | 第127-128页 |
| 7.3.3 体外消化实验 | 第128页 |
| 7.3.4 植物化学物(类胡萝卜素和酚类化合物)组成含量分析 | 第128页 |
| 7.3.5 化学方法测定体外抗氧化活性(DPPH、FRAP、ORAC) | 第128页 |
| 7.3.6 细胞内抗氧化活性(CAA) | 第128-129页 |
| 7.3.7 H_2O_2 氧化应激损伤乳腺细胞模型 | 第129-130页 |
| 7.4 数据处理 | 第130页 |
| 7.5 结果 | 第130-137页 |
| 7.5.1 紫色番茄消化前后植物化学物含量及其体外抗氧化活性的变化 | 第130-132页 |
| 7.5.2 紫色番茄提取液的对乳腺细胞的毒性作用 | 第132-134页 |
| 7.5.3 紫色番茄提取液的细胞内抗氧化能力 | 第134-135页 |
| 7.5.4 体外消化前后紫色番茄提取液对H202诱导的不同乳腺细胞损伤的保护作用 | 第135-137页 |
| 7.6 讨论 | 第137-138页 |
| 7.6.1 紫色番茄的植物化学物有较强的细胞内抗氧化能力 | 第137页 |
| 7.6.2 紫色番茄植物化学物的抗癌作用 | 第137-138页 |
| 7.7 小结 | 第138-139页 |
| 第8章 紫色番茄对大鼠足肿胀的抑制作用 | 第139-151页 |
| 8.1 引言 | 第139-140页 |
| 8.2 试验材料与设备 | 第140-141页 |
| 8.2.1 原料 | 第140页 |
| 8.2.2 试剂 | 第140页 |
| 8.2.3 标准品 | 第140页 |
| 8.2.4 清洁级Wistar大鼠 | 第140页 |
| 8.2.5 实验仪器 | 第140-141页 |
| 8.3 试验方法 | 第141-145页 |
| 8.3.1 原料预处理 | 第141页 |
| 8.3.2 样品提取 | 第141页 |
| 8.3.3 大鼠喂养条件 | 第141页 |
| 8.3.4 动物实验分组的确立 | 第141-142页 |
| 8.3.5 大鼠足肿胀抑制实验 | 第142页 |
| 8.3.6 MDA含量的测定 | 第142-143页 |
| 8.3.7 NO含量的测定 | 第143页 |
| 8.3.8 GSH-Px酶活力的测定 | 第143-144页 |
| 8.3.9 SOD酶活力的测定 | 第144-145页 |
| 8.4 数据处理 | 第145页 |
| 8.5 结果 | 第145-148页 |
| 8.5.1 不同组间大鼠足肿胀抑制率的差异 | 第145-147页 |
| 8.5.2 不同组间大鼠MDA含量的差异 | 第147页 |
| 8.5.3 不同组间大鼠NO含量的差异 | 第147-148页 |
| 8.5.4 不同组间大鼠GSH-Px酶活力的差异 | 第148页 |
| 8.5.5 不同组间大鼠SOD酶活力的差异 | 第148页 |
| 8.6 讨论 | 第148-150页 |
| 8.6.1 番茄的抗炎能力与植物化学物的含量相关 | 第149页 |
| 8.6.2 紫色番茄有较强的体内抗炎能力 | 第149页 |
| 8.6.3 番茄的抗炎能力可能与调节MDA、NO及GSH-Px、SOD酶活力有关 | 第149-150页 |
| 8.7 小结 | 第150-151页 |
| 第9章 结论与展望 | 第151-154页 |
| 9.1 结论 | 第151-153页 |
| 9.1.1 建立快速、高效番茄中植物化学物的UPLC分离方法 | 第151页 |
| 9.1.2 以最佳体外抗氧化活性为指标,MAE对番茄中酚类化合物提取条件的优化 | 第151页 |
| 9.1.3 不同番茄品种的植物化学物含量有显著性差异 | 第151页 |
| 9.1.4 紫色番茄中的植物化学物具有特性 | 第151-152页 |
| 9.1.5 不同番茄品种的体外抗氧化活性评价 | 第152页 |
| 9.1.6 番茄植物化学物含量与其体外抗氧化活性呈正相关 | 第152页 |
| 9.1.7 番茄脂溶性提取物对H_2O_2诱导下的H9c2心肌细胞具有保护作用 | 第152-153页 |
| 9.1.8 紫色番茄的植物化学物对乳腺癌细胞生长有抑制作用 | 第153页 |
| 9.1.9 紫色番茄对大鼠足肿胀有抑制作用 | 第153页 |
| 9.2 进一步工作方向 | 第153-154页 |
| 创新之处 | 第154-155页 |
| 致谢 | 第155-156页 |
| 参考文献 | 第156-167页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第167-169页 |
