| 摘要 | 第5-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 第一章 绪论 | 第10-15页 |
| 1.1 抗肿瘤药物的现状 | 第10-12页 |
| 1.1.1 肿瘤 | 第10页 |
| 1.1.2 肿瘤发生的阶段 | 第10页 |
| 1.1.3 乳腺癌的概况与用药治疗 | 第10-12页 |
| 1.1.4 硫色满酮类的研究背景及意义 | 第12页 |
| 1.2 抗肿瘤药物作用机制 | 第12-15页 |
| 1.2.1 细胞周期与凋亡的关系 | 第12-13页 |
| 1.2.2 肿瘤细胞周期机制 | 第13页 |
| 1.2.3 肿瘤细胞凋亡 | 第13-14页 |
| 1.2.4 细胞凋亡与 caspase 的激活 | 第14-15页 |
| 第二章 28 种新硫色满酮衍生物的体外抗肿瘤活性研究 | 第15-31页 |
| 2.1 引言 | 第15-17页 |
| 2.2 材料和方法 | 第17-20页 |
| 2.2.1 材料 | 第17-18页 |
| 2.2.2 药品与试剂 | 第18页 |
| 2.2.3 主要仪器 | 第18-19页 |
| 2.2.4 供试药物与顺铂的配制 | 第19页 |
| 2.2.5 细胞培养 | 第19页 |
| 2.2.6 MTT 法检测药物对 12 种细胞的抑制情况 | 第19-20页 |
| 2.2.7 CFTK，CMTK 处理时间与抑制率的关系检测 | 第20页 |
| 2.2.8 细胞形态学观察 | 第20页 |
| 2.2.9 数据处理 | 第20页 |
| 2.3 结果 | 第20-29页 |
| 2.3.1 形态学观察 | 第20-21页 |
| 2.3.2 16 种新硫色满酮衍生物的体外抗肿瘤活性 | 第21-26页 |
| 2.3.3 供试药品与 CDDP 半数抑制浓度(IC50) | 第26-28页 |
| 2.3.4 CFTK 和 CMTK 对肿瘤细胞系抑制率与处理时间的关系 | 第28-29页 |
| 2.4 讨论 | 第29-31页 |
| 第三章 新硫色满酮衍生物 CMTK 诱导人乳腺癌 MCF-7 细胞凋亡 | 第31-42页 |
| 3.1 引言 | 第31页 |
| 3.2 材料和方法 | 第31-34页 |
| 3.2.1 材料 | 第31-32页 |
| 3.2.2 药物配制 | 第32页 |
| 3.2.3 MCF-7 细胞培养 | 第32页 |
| 3.2.4 MTT 法测定 MCF-7 细胞生长抑制率 | 第32页 |
| 3.2.5 台盼蓝排斥法测定细胞活力和细胞生长曲线 | 第32-33页 |
| 3.2.6 缺口末端核苷酸标记法(TUNEL)检测细胞凋亡 | 第33页 |
| 3.2.7 流式细胞仪检测 CMTK 对 MCF-7 细胞周期的影响 | 第33页 |
| 3.2.8 流式细胞仪检测 CMTK 对 MCF-7 细胞凋亡的影响 | 第33-34页 |
| 3.2.9 caspase-8 和 caspase-9 活性的测定 | 第34页 |
| 3.2.10 ELISA 法检测 TNF-α细胞因子的含量 | 第34页 |
| 3.2.11 ELISA 法检测 DR3，TNFR1，caspase-3 的蛋白量 | 第34页 |
| 3.2.12 数据处理与统计学分析 | 第34页 |
| 3.3 结果 | 第34-39页 |
| 3.3.1 CMTK 对 MCF-7 细胞的体外抗肿瘤活性和半数抑制浓度(IC50) | 第34-35页 |
| 3.3.2 CMTK 对 MCF-7 细胞生长曲线的影响 | 第35页 |
| 3.3.3 流式细胞术检测 CMTK 对 MCF-7 细胞周期的影响 | 第35-36页 |
| 3.3.4 TUNEL 法和流式细胞术检测 CMTK 诱导 MCF-7 细胞凋亡 | 第36-37页 |
| 3.3.5 caspase-8 和 caspase-9 活性的测定 | 第37-38页 |
| 3.3.6 ELISA 法检测 DR3，TNFR1，TNF-α和 caspase-3 的含量 | 第38-39页 |
| 3.4 讨论 | 第39-42页 |
| 结论 | 第42-43页 |
| 参考文献 | 第43-47页 |
| 致谢 | 第47页 |
