| 摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-6页 |
| 缩略词表 | 第9-10页 |
| 第1章 引言 | 第10-14页 |
| 1.1 前列腺炎（PROSTATITIS） | 第10-11页 |
| 1.2 前列腺炎动物模型 | 第11页 |
| 1.3 前列腺炎性疼痛 | 第11-12页 |
| 1.4 BNP 和 NRP-A | 第12-13页 |
| 1.5 本论文研究基础和研究意义 | 第13-14页 |
| 第2章 材料与方法 | 第14-22页 |
| 2.1 材料 | 第14-16页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第14页 |
| 2.1.2 主要仪器设备 | 第14-15页 |
| 2.1.3 主要试剂 | 第15-16页 |
| 2.1.4 主要的溶液成分和试剂配制 | 第16页 |
| 2.2 方法 | 第16-22页 |
| 2.2.1 实验动物的分组 | 第16页 |
| 2.2.2 慢性非细菌性前列腺炎（CNP）大鼠模型的建立 | 第16-17页 |
| 2.2.3 前列腺及脊髓背角神经节（DRGs）组织的提取 | 第17页 |
| 2.2.4 前列腺组织细菌学培养 | 第17页 |
| 2.2.5 前列腺组织 HE 染色 | 第17-18页 |
| 2.2.6 Trizol 法提取各个实验组 L5-S2 DRGs 总 RNA | 第18-19页 |
| 2.2.7 逆转录 CDNA（用 Fermentas Kit，具体见 Kit 说明书） | 第19-20页 |
| 2.2.8 Real-time PCR | 第20-21页 |
| 2.2.9 图像分析及统计学分析 | 第21-22页 |
| 第3章 结果 | 第22-30页 |
| 3.1 CFA 注射法对大鼠前列腺脏器指数的影响 | 第22-23页 |
| 3.2 组织细菌学培养结果 | 第23页 |
| 3.3 前列腺组织 HE 染色结果 | 第23-26页 |
| 3.4 总 RNA 纯度浓度测定结果及 RNA 完整性检测 | 第26页 |
| 3.5 半定量 PCR 产物琼脂糖凝胶电泳结果 | 第26-28页 |
| 3.6 实时荧光定量 PCR 检测 BNP 及 NPR-A 的表达 | 第28-30页 |
| 第4章 讨论 | 第30-35页 |
| 4.1 慢性非细菌性前列腺炎大鼠模型的建立 | 第30-31页 |
| 4.2 前列腺炎性疼痛与 L5-S2 神经节的关系 | 第31页 |
| 4.3 BNP/NPR-A/PKG/BKCA 信号通路的相关研究 | 第31-32页 |
| 4.4 BNP 及 NPR-A 在慢性非细菌性前列腺炎 DRG 中的表达 | 第32-33页 |
| 4.5 慢性非细菌性前列腺炎疼痛治疗现状及寻找新的镇痛靶标 | 第33-35页 |
| 第5章 结论与展望 | 第35-36页 |
| 5.1 结论 | 第35页 |
| 5.2 本论文研究的创新性 | 第35页 |
| 5.3 进一步研究工作 | 第35-36页 |
| 致谢 | 第36-37页 |
| 参考文献 | 第37-40页 |
| 附图 | 第40-44页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第44-45页 |
| 综述 | 第45-50页 |
| 参考文献 | 第49-50页 |
