| 前言 | 第4-5页 |
| 中文摘要 | 第5-10页 |
| Abstract | 第10-14页 |
| 绪论 | 第22-24页 |
| 第1章 SCs的体外培养、纯化以及鉴定 | 第24-34页 |
| 1.1 引言 | 第24页 |
| 1.2 材料与方法 | 第24-29页 |
| 1.2.1 主要仪器与试剂 | 第24-26页 |
| 1.2.2 实验动物 | 第26页 |
| 1.2.3 SCs分离、培养以及纯化 | 第26-29页 |
| 1.3 结果 | 第29-31页 |
| 1.3.1 SCs生物学性状观察 | 第29页 |
| 1.3.2 细胞计数和生长曲线 | 第29-30页 |
| 1.3.3 SCs的纯度以及鉴定 | 第30-31页 |
| 1.4 讨论 | 第31-32页 |
| 1.5 结论 | 第32-34页 |
| 第2章 lenti-Ch ABC在体内外实验中的应用 | 第34-44页 |
| 2.1 引言 | 第34页 |
| 2.2 材料与方法 | 第34-38页 |
| 2.2.1 主要仪器与试剂 | 第34-36页 |
| 2.2.2 实验动物 | 第36页 |
| 2.2.3 实验方法 | 第36-37页 |
| 2.2.3.1 Lenti-Ch ABC 的体外实验 | 第36页 |
| 2.2.3.2 大鼠椎板T10的定位 | 第36-37页 |
| 2.2.4 术后护理 | 第37页 |
| 2.2.5 取材 | 第37-38页 |
| 2.3 实验结果 | 第38-39页 |
| 2.3.1 lenti- ChABC转染的T 29 3 细胞能够分泌有活性的Chondroitinase | 第38-39页 |
| 2.3.2 Lenti-GFP能够在体内存活并转染 | 第39页 |
| 2.4 讨论 | 第39-42页 |
| 2.5 结论 | 第42-44页 |
| 第3章 大鼠NYU脊髓挫伤动物模型的建立 | 第44-54页 |
| 3.1 引言 | 第44页 |
| 3.2 材料与方法 | 第44-49页 |
| 3.2.1 主要仪器与试剂 | 第44-45页 |
| 3.2.2 实验动物 | 第45页 |
| 3.2.3 手术过程 | 第45-47页 |
| 3.2.4 术后护理 | 第47页 |
| 3.2.5 大鼠后肢运动功能（BBB）评分 | 第47-48页 |
| 3.2.6 取材 | 第48-49页 |
| 3.3 实验结果 | 第49-50页 |
| 3.3.1 大鼠SCI后的一般情况 | 第49页 |
| 3.3.2 术后运动功能评价 | 第49-50页 |
| 3.4 讨论 | 第50-52页 |
| 3.5 结论 | 第52-54页 |
| 第4章 lenti-Ch ABC和SCs对CSPG的影响 | 第54-68页 |
| 4.1 引言 | 第54页 |
| 4.2 材料与方法 | 第54-59页 |
| 4.2.1 主要仪器与试剂 | 第54-55页 |
| 4.2.2 实验动物 | 第55-56页 |
| 4.2.3 NYU模型的建立 | 第56-57页 |
| 4.2.4 SCs的培养 | 第57页 |
| 4.2.5 SCs的移植 | 第57页 |
| 4.2.6 lenti-Ch ABC的注射 | 第57-58页 |
| 4.2.7 术后护理 | 第58页 |
| 4.2.8 取材 | 第58-59页 |
| 4.3 实验结果 | 第59-65页 |
| 4.3.1 局部CS56、GFAP表达的变化 | 第59-62页 |
| 4.3.2 局部 2B6的变化。 | 第62-65页 |
| 4.4 讨论 | 第65-66页 |
| 4.5 结论 | 第66-68页 |
| 第5章 Lenti-Ch ABC对SCs迁移的影响 | 第68-82页 |
| 5.1 引言 | 第68-69页 |
| 5.2 材料与方法 | 第69-74页 |
| 5.2.1 主要仪器与试剂 | 第69-71页 |
| 5.2.2 实验动物 | 第71页 |
| 5.2.3 NYU模型的建立 | 第71-72页 |
| 5.2.4 SCs的培养 | 第72页 |
| 5.2.5 SCs的移植 | 第72-73页 |
| 5.2.6 lenti-Ch ABC的注射 | 第73页 |
| 5.2.7 术后护理 | 第73页 |
| 5.2.8 取材 | 第73-74页 |
| 5.3 实验设计原理 | 第74-75页 |
| 5.4 结果 | 第75-78页 |
| 5.4.1 SCs能够在损伤后动物体内存活并具有功能性作用 | 第75-76页 |
| 5.4.2 Lenti-Ch ABC治疗能够促进SCs的迁移 | 第76-78页 |
| 5.5 讨论 | 第78-80页 |
| 5.6 结论 | 第80-82页 |
| 第6章 Lenti-Ch ABC与SCs联合干预对大鼠脊髓损伤后轴突再生的影响 | 第82-96页 |
| 6.1 引言 | 第82页 |
| 6.2 材料与方法 | 第82-87页 |
| 6.2.1 主要仪器与试剂 | 第82-84页 |
| 6.2.2 实验动物 | 第84页 |
| 6.2.3 NYU模型的建立 | 第84-85页 |
| 6.2.4 SCs的培养 | 第85页 |
| 6.2.5 SCs 的移植 | 第85-86页 |
| 6.2.6 lenti-Ch ABC的注射 | 第86页 |
| 6.2.7 术后护理 | 第86-87页 |
| 6.2.8 取材 | 第87页 |
| 6.3 结果 | 第87-93页 |
| 6.3.1 大鼠脊髓损伤后一般情况及脊髓大体标本 | 第87页 |
| 6.3.2 免疫组化染色显示治疗促进 5-HT 轴突的再生 | 第87-89页 |
| 6.3.3 免疫组化染色示治疗促进TH轴突的再生 | 第89-93页 |
| 6.4 讨论 | 第93-94页 |
| 6.5 结论 | 第94-96页 |
| 第7章 Lenti-Ch ABC与Scs联合应用促进行为学功能恢复 | 第96-112页 |
| 7.1 引言 | 第96页 |
| 7.2 材料与方法 | 第96-103页 |
| 7.2.1 主要仪器与试剂 | 第96-98页 |
| 7.2.2 实验动物 | 第98-99页 |
| 7.2.3 行为学检测 | 第99-100页 |
| 7.2.4 NYU模型的建立 | 第100-101页 |
| 7.2.5 SCs的培养 | 第101页 |
| 7.2.6 SCs的移植 | 第101-102页 |
| 7.2.7 lenti-Ch ABC的注射 | 第102页 |
| 7.2.8 术后护理 | 第102页 |
| 7.2.9 取材 | 第102-103页 |
| 7.3 结果 | 第103-110页 |
| 7.3.1 SCs移植后的生物学性状观察 | 第103-105页 |
| 7.3.2 行为学恢复 | 第105-110页 |
| 7.4 讨论 | 第110-111页 |
| 7.5 结论 | 第111-112页 |
| 第8章 Lenti-Ch ABC联合SCs对脊髓损伤后膀胱尿道功能的改善 | 第112-122页 |
| 8.1 引言 | 第112页 |
| 8.2 材料与方法 | 第112-118页 |
| 8.2.1 主要仪器与试剂 | 第112-114页 |
| 8.2.2 实验动物 | 第114页 |
| 8.2.3 NYU模型的建立 | 第114-116页 |
| 8.2.4 SCs的培养 | 第116页 |
| 8.2.5 SCs 的移植 | 第116页 |
| 8.2.6 lenti-Ch ABC的注射 | 第116-117页 |
| 8.2.7 术后护理 | 第117页 |
| 8.2.8 尿功能检测 | 第117-118页 |
| 8.3 结果 | 第118-121页 |
| 8.3.1 脊髓损伤后尿储留的变化 | 第118-119页 |
| 8.3.2 脊髓损伤后尿储留的变化 | 第119-121页 |
| 8.4 讨论 | 第121页 |
| 8.5 结论 | 第121-122页 |
| 第9章 全文总结 | 第122-124页 |
| 参考文献 | 第124-134页 |
| 作者简介及在学期间所取得的科研成果 | 第134-136页 |
| 致谢 | 第136页 |
