| 摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-6页 |
| 中英文缩略词表 | 第9-10页 |
| 第1章 引言 | 第10-13页 |
| 第2章 材料与方法 | 第13-26页 |
| 2.1 实验材料 | 第13-17页 |
| 2.1.1 实验细胞与实验动物 | 第13页 |
| 2.1.2 实验试剂 | 第13-15页 |
| 2.1.3 实验主要培养液的配制 | 第15-16页 |
| 2.1.4 实验仪器和实验耗材 | 第16-17页 |
| 2.2 实验方法 | 第17-24页 |
| 2.2.1 实验器材的准备 | 第17页 |
| 2.2.2 原代MEF的提取、培养与冻存 | 第17-18页 |
| 2.2.3 MEF的复苏、传代和饲养层细胞的制备 | 第18-19页 |
| 2.2.4 小鼠iPSCs的复苏、传代与冻存 | 第19页 |
| 2.2.5 小鼠iPSCs的鉴定及拟胚体形成 | 第19-22页 |
| 2.2.6 小鼠iPSCs向嗅受体神经元细胞及僧帽/丛细胞诱导分化 | 第22-24页 |
| 2.3 统计学分析 | 第24-26页 |
| 第3章 结果 | 第26-29页 |
| 3.1 原代MEF的形态及饲养层细胞的特点 | 第26页 |
| 3.2 小鼠iPSCs、拟胚体的生长特点及多能性检测结果 | 第26页 |
| 3.3 原代嗅上皮及嗅球细胞培养特点 | 第26页 |
| 3.4 经共培养后小鼠iPSCs的形态学特点 | 第26-27页 |
| 3.5 小鼠iPSCs诱导后细胞相关标志物的表达 | 第27页 |
| 3.5.1 嗅上皮诱导分化组嗅受体神经元相关标志物的免疫荧光结果 | 第27页 |
| 3.5.2 嗅球诱导分化组僧帽/丛细胞相关标志物的免疫荧光结果 | 第27页 |
| 3.6 RT-PCR检测嗅受体神经元及僧帽/丛细胞相关基因的表达情况 | 第27页 |
| 3.7 统计学分析结果 | 第27-29页 |
| 第4章 讨论 | 第29-33页 |
| 第5章 结论 | 第33-34页 |
| 致谢 | 第34-35页 |
| 参考文献 | 第35-39页 |
| 附图 | 第39-47页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第47-48页 |
| 综述 干细胞移植治疗嗅觉障碍研究进展 | 第48-55页 |
| 参考文献 | 第52-55页 |
