| 提要 | 第1-4页 |
| Abstract | 第4-9页 |
| 引言 | 第9-11页 |
| 材料与方法 | 第11-21页 |
| 1 实验材料 | 第11-13页 |
| ·实验动物 | 第11页 |
| ·实验试剂和药物 | 第11-12页 |
| ·细胞培养试剂 | 第11页 |
| ·Western blot试剂 | 第11-12页 |
| ·试验药物 | 第12页 |
| ·实验仪器 | 第12页 |
| ·细胞培养仪器 | 第12页 |
| ·Western blot仪器 | 第12页 |
| ·造模仪器 | 第12页 |
| ·实验溶液 | 第12-13页 |
| ·Western blot溶液 | 第12-13页 |
| ·细胞培养溶液 | 第13页 |
| 2 实验步骤及方法 | 第13-21页 |
| ·含药血清制备 | 第13-15页 |
| ·动物筛选 | 第13页 |
| ·慢性应激束缚法造模给药 | 第13-14页 |
| ·旷场试验 | 第14页 |
| ·制备血清 | 第14-15页 |
| ·海马原代神经元体外培养 | 第15-16页 |
| ·新生大鼠海马原代神经细胞培养 | 第15页 |
| ·MTT测定细胞相对活力 | 第15-16页 |
| ·ERβ、5-HTR1A、MAOA、MAOB、5-HTT蛋白表达水平检测 | 第16-20页 |
| ·总蛋白的提取 | 第16页 |
| ·样品蛋白含量的测定 | 第16-17页 |
| ·SDS-PAGE电泳 | 第17-18页 |
| ·电转移 | 第18-19页 |
| ·免疫反应 | 第19-20页 |
| ·抗体稀释比例 | 第20页 |
| ·显影与图像分析 | 第20页 |
| ·统计方法 | 第20-21页 |
| 结果 | 第21-28页 |
| 1 行为学测试结果 | 第21-23页 |
| ·各组大鼠体重称量结果 | 第21-22页 |
| ·各组大鼠旷场实验得分 | 第22-23页 |
| 2. MTT测定细胞相对活力 | 第23-24页 |
| 3 ERβ、5-HTRlA、MAOA、MAOB、5-HTT表达水平检测结果 | 第24-28页 |
| ·经前舒颗粒含药血清对原代培养大鼠海马神经元ERβ受体蛋白表达量影响 | 第24-25页 |
| ·经前舒颗粒含药血清对原代培养大鼠海马神经元5-HTR1A受体蛋白表达量影响 | 第25-26页 |
| ·经前舒颗粒含药血清对原代培养大鼠海马神经元MAOA受体蛋白表达量影响 | 第26-27页 |
| ·经前舒颗粒含药血清对原代培养大鼠海马神经元5-HTT蛋白表达量影响 | 第27-28页 |
| 讨论 | 第28-42页 |
| 一、PMS肝气郁证发病机制 | 第28-29页 |
| 二、海马神经元与PMS肝气郁证 | 第29-31页 |
| ·海马神经元与抑郁情绪的相关性 | 第29-30页 |
| ·抗抑郁药促进海马神经元生长的分子机制 | 第30-31页 |
| 三、5-HT系统与PMS | 第31-36页 |
| ·5-HT系统与5-HTR1A受体 | 第31-34页 |
| ·5-HTT对5-HT的摄取 | 第34-35页 |
| ·MAOA对5-HT的降解代谢 | 第35-36页 |
| 四、ERβ与5-HTR1A,MAOA,5-HTT的相互作用及PMS肝气郁证信号通路初步推断 | 第36-38页 |
| ·ERβ与5-HTR1A,MAOA,5-HTT的相互作用 | 第36-37页 |
| ·ERβ及其相关蛋白信号通路受体在PMS肝气郁证中的作用机制初步推断 | 第37-38页 |
| 五、肝气郁证动物模型研究现状 | 第38-40页 |
| ·常用肝气郁证动物模型及模型建立依据 | 第38-39页 |
| ·肝气郁证大鼠模型的建立及评价 | 第39-40页 |
| 六 经前舒颗粒的有效成分及与ERβ信号通路靶点相关性 | 第40-41页 |
| 七、问题与展望 | 第41-42页 |
| 结语 | 第42-43页 |
| 参考文献 | 第43-49页 |
| 附录 | 第49-56页 |
| 综述 | 第56-61页 |
| 参考文献 | 第59-61页 |
| 致谢 | 第61-62页 |
| 论文著作 | 第62-69页 |
| 硕士学位论文摘要 | 第69-74页 |
