| 缩略语表 | 第5-6页 |
| 中文摘要 | 第6-10页 |
| 英文摘要 | 第10-14页 |
| 前言 | 第15-17页 |
| 文献回顾 | 第17-23页 |
| 第一部分 人牙髓干细胞的分离、培养与鉴定 | 第23-32页 |
| 1 实验材料 | 第23-25页 |
| 1.1 细胞来源 | 第23页 |
| 1.2 主要仪器 | 第23-24页 |
| 1.3 主要试剂 | 第24-25页 |
| 1.4 常用配置试剂 | 第25页 |
| 2 实验方法 | 第25-28页 |
| 2.1 人牙髓干细胞(HDPSCs)的分离与培养 | 第25-26页 |
| 2.2 人牙髓干细胞(HDPSCs)的鉴定 | 第26-27页 |
| 2.3 定向诱导分化和鉴定 | 第27-28页 |
| 2.4 统计学分析 | 第28页 |
| 3 结果 | 第28-30页 |
| 3.1 细胞的形态学观察 | 第28页 |
| 3.2 牙髓干细胞的鉴定 | 第28-30页 |
| 4 讨论 | 第30-32页 |
| 第二部分 Notch信号通路对人牙髓干细胞的影响 | 第32-43页 |
| 1 实验材料 | 第32-33页 |
| 1.1 细胞来源 | 第32页 |
| 1.2 主要仪器设备 | 第32-33页 |
| 1.3 主要试剂 | 第33页 |
| 2 实验方法 | 第33-37页 |
| 2.1 实验分组 | 第33页 |
| 2.2 HDPSCs的分离与培养 | 第33页 |
| 2.3 HDPSCs增殖能力的观察 | 第33-34页 |
| 2.4 反转录PCR(reverse transcription PCR,RT-PCR)检测相关基因的表达 302.5 牙髓干细胞分化能力的检测 | 第34-37页 |
| 2.5 牙髓干细胞分化能力的检测 | 第37页 |
| 2.6 统计学分析 | 第37页 |
| 3 实验结果 | 第37-41页 |
| 3.1 PCR引物验证结果 | 第37-38页 |
| 3.2 Notch信号通路阻断效率的检测 | 第38-39页 |
| 3.3 Notch信号通路阻断对HDPSCs干性的影响 | 第39页 |
| 3.4 Notch信号通路阻断对HDPSCs增殖的影响 | 第39-40页 |
| 3.5 Notch信号通路阻断对HDPSCs分化能力的影响 | 第40-41页 |
| 4 讨论 | 第41-43页 |
| 第三部分 低氧和Notch信号通路对人牙髓干细胞的影响 | 第43-60页 |
| 1 实验材料 | 第43-46页 |
| 1.1 细胞来源 | 第43页 |
| 1.2 主要仪器设备 | 第43-44页 |
| 1.3 主要试剂 | 第44页 |
| 1.4 溶液配制 | 第44-46页 |
| 2 实验方法 | 第46-49页 |
| 2.1 HDPSCs的分离与培养 | 第46页 |
| 2.2 HDPSCs的低氧环境培养 | 第46页 |
| 2.3 RNA抽提与反转录PCR | 第46页 |
| 2.4 HDPSCs增殖与分化能力的观察 | 第46页 |
| 2.5 细胞总蛋白提取 | 第46-47页 |
| 2.6 Western Blot检测 | 第47-48页 |
| 2.7 细胞周期检测 | 第48页 |
| 2.8 Annexin Ⅴ/PI双染法检测细胞凋亡 | 第48-49页 |
| 2.9 统计学分析 | 第49页 |
| 3 实验结果 | 第49-58页 |
| 3.1 不同浓度CoCl_2 模拟低氧环境的剂量效应 | 第49-50页 |
| 3.2 模拟低氧环境可激活Notch信号通路 | 第50-51页 |
| 3.3 低氧以及低氧条件下阻断Notch信号通路对HDPSCs干性的影响 | 第51-52页 |
| 3.4 低氧以及低氧条件下阻断Notch信号通路对HDPSCs细胞增殖的影响 .. 48 | 第52-53页 |
| 3.5 低氧以及低氧条件下阻断Notch信号通路对HDPSCs细胞周期和凋亡的影响 | 第53-55页 |
| 3.6 低氧以及低氧条件下阻断Notch信号通路对HDPSCs分化的影响 | 第55-58页 |
| 4 讨论 | 第58-60页 |
| 小结 | 第60-62页 |
| 参考文献 | 第62-68页 |
| 个人简历和研究成果 | 第68-69页 |
| 致谢 | 第69页 |
