| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-8页 |
| 主要英文缩写对照 | 第11-13页 |
| 第一章 文献综述 | 第13-29页 |
| 1.1 狂犬病病毒的概述 | 第13-19页 |
| 1.1.1 狂犬病病毒结构特征 | 第13-14页 |
| 1.1.2 狂犬病病毒的入侵途径及复制过程 | 第14-16页 |
| 1.1.3 狂犬病病毒的致病性 | 第16-18页 |
| 1.1.4 狂犬病病毒的免疫原性与细胞凋亡 | 第18页 |
| 1.1.5 狂犬病病毒影响干扰素的产生 | 第18-19页 |
| 1.2 Tau蛋白的概述 | 第19-25页 |
| 1.2.1 Tau蛋白的结构特征 | 第19-21页 |
| 1.2.1.1 Tau蛋白突出区的结构与功能 | 第20-21页 |
| 1.2.1.2 微管结合域的结构和特征 | 第21页 |
| 1.2.2 Tau蛋白的磷酸化调节 | 第21-23页 |
| 1.2.3 Tau蛋白高度磷酸化的神经毒性 | 第23-24页 |
| 1.2.4 Tau磷酸化的生理作用 | 第24-25页 |
| 1.2.4.1 微管的结合 | 第24-25页 |
| 1.2.4.2 轴突增生 | 第25页 |
| 1.2.4.3 轴突运输 | 第25页 |
| 1.3 狂犬病病毒与细胞骨架的关系 | 第25-26页 |
| 1.4 高尔基体与Tau蛋白磷酸化关系 | 第26-27页 |
| 1.5 本研究的目的和意义 | 第27-29页 |
| 第二章 材料与方法 | 第29-35页 |
| 2.1 实验材料 | 第29-32页 |
| 2.1.1 病毒株 | 第29页 |
| 2.1.2 实验动物 | 第29-30页 |
| 2.1.3 主要试剂 | 第30页 |
| 2.1.4 试剂配制 | 第30-31页 |
| 2.1.4.1 SDS-PAGE所用试剂配制 | 第30-31页 |
| 2.1.4.2 Western blot所用试剂配制 | 第31页 |
| 2.1.5 实验仪器 | 第31-32页 |
| 2.2 实验方法 | 第32-35页 |
| 2.2.1 狂犬病病毒悬液的制备 | 第32页 |
| 2.2.2 小鼠攻毒试验 | 第32页 |
| 2.2.3 小鼠脑组织蛋白的提取 | 第32-33页 |
| 2.2.4 蛋白样品的处理 | 第33页 |
| 2.2.5 Western blot试验 | 第33-35页 |
| 第三章 实验结果 | 第35-49页 |
| 3.1 狂犬病街毒株感染小鼠的脑内Tau蛋白磷酸化 | 第37-38页 |
| 3.2 狂犬病病毒G蛋白对Tau磷酸化的影响 | 第38-39页 |
| 3.3 狂犬病病毒强毒G蛋白致病性功能区对Tau蛋白磷酸化的影响 | 第39-41页 |
| 3.4 狂犬病病毒感染小鼠脑内Tau蛋白磷酸化与临床症状的相关性 | 第41-49页 |
| 第四章 讨论 | 第49-53页 |
| 4.1 狂犬病病毒感染可引起小鼠脑内Tau蛋白磷酸化 | 第49-50页 |
| 4.2 Tau蛋白磷酸化分析 | 第50-53页 |
| 第五章 结论 | 第53-54页 |
| 参考文献 | 第54-65页 |
| 致谢 | 第65-66页 |
| 攻读学位期间论文发表情况 | 第66页 |
